Summary

使用基于菲咯啉的比色法测量组织非血红素铁含量

Published: January 31, 2022
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Summary

在这里,提供了一种测量动物组织中非血红素铁含量的方案,使用一种简单,成熟的比色法,可以在大多数实验室中轻松实施。

Abstract

铁是一种必需的微量营养素。铁超负荷和缺乏都对人类非常有害,组织铁水平受到精细调节。铁超负荷或缺乏的实验动物模型的使用有助于提高铁稳态的全身和细胞调节机制的知识。动物组织中总铁水平的测量通常使用原子吸收光谱或基于非血红素铁与菲罗啉试剂反应的比色测定进行。多年来,比色测定法一直用于测量各种动物组织中的非血红素铁含量。与原子吸收光谱不同,它排除了来自红细胞中含有的血红蛋白的血红素铁的贡献。此外,它不需要复杂的分析技能或昂贵的设备,因此可以在大多数实验室中轻松实施。最后,比色法可以基于比色皿,也可以适应微孔板形式,从而实现更高的样品通量。本工作提供了一个完善的方案,适用于检测铁超载或缺铁的各种实验动物模型中组织铁水平的改变。

Introduction

铁是一种必需的微量营养素,是参与关键生物过程(如氧气运输、能量产生或DNA合成)的蛋白质功能所必需的。重要的是,铁过量和缺铁都对人体健康非常有害,组织铁水平受到精细调节。饮食中铁吸收异常、缺铁饮食、反复输血和慢性炎症是影响全球数十亿人的铁相关疾病的常见原因123

铁超负荷或缺乏的实验动物模型有助于提高我们对铁稳态的全身和细胞调节机制的了解4。尽管在过去二十年中取得了重大进展,但许多关键方面仍然难以捉摸。在未来几年,准确测量动物组织中的总铁水平仍将是推进铁生物学领域研究的关键一步。

大多数实验室使用原子吸收光谱(AAS),电感耦合血浆质谱(ICP-MS)或基于非血红素铁与菲螺母试剂反应的比色测定来定量组织铁。后者基于Torrance和Bothwell在50多年前描述的原始方法56。虽然随后开发了该方法的变体,采用亚铁嗪作为菲咯啉的替代品7,但后者仍然是文献中引用最广泛的显色试剂。

选择的方法通常取决于可用的专业知识和基础结构。虽然AAS和ICP-MS更敏感,但比色测定仍然被广泛使用,因为它具有以下重要优点:i)它排除了来自红细胞中含有的血红蛋白的血红素铁的贡献;ii)它不需要复杂的分析技能或昂贵的设备;iii)原始的基于比色皿的测定可以适应微孔板形式,从而实现更高的样品通量。这项工作中提出的比色方法通常用于量化从啮齿动物到鱼和果蝇的各种铁超载或缺铁实验动物模型中组织非血红素铁水平的变化。在这里,提供了一种测量动物组织中非血红素铁含量的方案,使用简单,成熟的比色测定法,大多数实验室应该发现易于实施。

Protocol

C57BL / 6小鼠是商业购买的,C57BL / 6背景上的铁调素空(Hamp1−/−)小鼠8 是Sophie Vaulont(法国科钦研究所)的善意礼物。动物被安置在i3S动物设施中,在特定的无病原体条件下,在温度和光线受控的环境中,可以自由获取标准的啮齿动物食物和水。欧洲鲈鱼(Dicentrarchus labrax)是从一个商业养鱼场购买的,饲养在ICBAS动物设施中,在温度和光线受控的环境中,…

Representative Results

比色皿与 96 孔微孔板比较通过与最初由Torrance和Botthwell5,6描述的菲咯啉试剂反应测量组织非血红素铁依赖于使用分光光度计进行吸光度读数。因此,染色原反应中使用的体积与常规分光光度计比色皿的大小相容。本工作描述了一种方法适应性,其中染色原反应直接在96孔微孔板中制备,用于在酶标仪中测量吸光度,需要更小的试剂体积?…

Discussion

提供了测量动物组织中非血红素铁含量的方案,使用最初由Torrance和Bothwell描述的基于菲罗啉的比色测定法的适应性56。该方法的关键步骤是组织样品干燥;蛋白质变性并通过酸水解释放无机铁;在还原剂硫代乙醇酸存在下将铁(Fe3 +)还原为亚铁状态(Fe2 +),并将其与菲咯啉试剂反应(染色原反应);所得黑色离子/菲咯啉粉红色复合物?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

这项工作由国家基金通过FCT-Fundação para a Ciência e a Tecnologia,I.P.资助,在UIDB/04293/2020项目下。

Materials

96 well UV transparent plate Sarstedt 82.1581.001
Analytical balance Kern ABJ 220-4M
Anhydrous sodium acetate Merck 106268
Bathophenanthroline sulfonate (4,7-Diphenyl-1,10-phenantroline dissulfonic acid) Sigma-Aldrich B1375
C57BL/6 mice (Mus musculus) Charles River Laboratories
Carbonyl iron powder, ≥99.5% Sigma-Aldrich 44890
Disposable cuvettes in polymethyl methacrylate (PMMA) VWR 634-0678P
Double distilled, sterile water B. Braun 0082479E
Fluorescence microplate reader BioTek Instruments FLx800
Hydrochloric acid, 37% Sigma-Aldrich 258148
Microwave digestion oven and white teflon cups CEM MDS-2000
Nitric acid Fisher Scientific 15687290
Oven Binder ED115
Rodent chow Harlan Laboratories 2014S Teklad Global 14% Protein Rodent Maintenance Diet containing 175 mg/kg iron
Sea bass (Dicentrarchus labrax) Sonrionansa
Sea bass feed Skretting L-2 Alterna 1P
Single beam UV-Vis spectrophotometer Shimadzu UV mini 1240
Thioglycolic acid Merck 100700
Trichloroacetic acid Merck 100807

References

  1. Muckenthaler, M. U., Rivella, S., Hentze, M. W., Galy, B. A red carpet for iron metabolism. Cell. 168, 344-361 (2017).
  2. Pagani, A., Nai, A., Silvestri, L., Camaschella, C. Hepcidin and anemia: A tight relationship. Frontiers in Physiology. 10, 1294 (2019).
  3. Weiss, G., Ganz, T., Goodnough, L. T. Anemia of inflammation. Blood. 133 (1), 40-50 (2019).
  4. Altamura, S., et al. Regulation of iron homeostasis: Lessons from mouse models. Molecular Aspects of Medicine. 75, 100872 (2020).
  5. Torrance, J. D., Bothwell, T. H. A simple technique for measuring storage iron concentrations in formalinised liver samples. South African Journal of Medical Sciences. 33 (1), 9-11 (1968).
  6. Torrence, J. D., Bothwell, T. H., Cook, J. D. Tissue iron stores. Methods in Haematology. , 104-109 (1980).
  7. Rebouche, C. J., Wilcox, C. L., Widness, J. A. Microanalysis of non-heme iron in animal tissues. Journal of Biochemical and Biophysical Methods. 58 (3), 239-251 (2004).
  8. Lesbordes-Brion, J. C., et al. Targeted disruption of the hepcidin 1 gene results in severe hemochromatosis. Blood. 108, 1402-1405 (2006).
  9. Jumbo-Lucioni, P., et al. Systems genetics analysis of body weight and energy metabolism traits in Drosophila melanogaster. BMC Genomics. 11, 297 (2010).
  10. Mandilaras, K., Pathmanathan, T., Missirlis, F. Iron Absorption in Drosophila melanogaster. Nutrients. 5, 1622-1647 (2013).
  11. Grundy, M. A., Gorman, N., Sinclair, P. R., Chorney, M. J., Gerhard, G. S. High-throughput non-heme iron assay for animal tissues. Journal of Biochemical and Biophysical Methods. 59, 195-200 (2004).
  12. Adrian, W. J., Stevens, M. L. Wet versus dry weights for heavy metal toxicity determinations in duck liver. Journal of Wildlife Diseases. 15, 125-126 (1979).
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Cite This Article
Duarte, T. L., Neves, J. V. Measurement of Tissue Non-Heme Iron Content using a Bathophenanthroline-Based Colorimetric Assay. J. Vis. Exp. (179), e63469, doi:10.3791/63469 (2022).

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