Summary

Микропланшет анализа для оценки химического воздействия на RBL-2H3 дегрануляцию тучных клеток: Влияние триклозан без использования органического растворителя

Published: November 01, 2013
doi:

Summary

Дегрануляцию тучных клеток, высвобождение медиаторов аллергии, играет важную роль в аллергии, астмы и паразитов защиты. Здесь мы показываем, методы 1 для оценки воздействия наркотиков и токсикантов на дегрануляцию, методология недавно использовали проявляют мощное тормозящее действие антибактериальный агент триклозан 2.

Abstract

Тучные клетки играют важную роль в аллергических заболеваний и иммунной защиты от паразитов. После активации (например, путем аллергеном), их дегрануляции, процесс, который приводит к экзоцитоз медиаторов аллергии. Модуляция дегрануляцию тучных клеток на наркотики и токсические вещества могут иметь положительные или неблагоприятное воздействие на здоровье человека. Мачта функции клеток была расчлененный подробно с использованием крыс базофильные клетки лейкоз тучных (RBL-2H3), широко распространенной моделью человеческой клетки слизистой оболочки мачта 3-5. Мачта компонент гранул клеток и аллергический посредник β-гексозаминидазы, которая распространяется линейно в тандеме с гистамина из тучных клеток 6, можно легко и надежно измерять посредством реакции с флуорогенного субстрата с образованием измеримые интенсивности флуоресценции в микропланшет-анализа, который поддается высокой пропускной исследования 1. Первоначально опубликовано Naal соавт. 1, мы адаптировали эту дегрануляции тест для скрининга OF наркотиков и токсикантов и продемонстрировать его использование здесь.

Триклозан широким спектром антибактериального агента, который присутствует во многих потребительских товарах и было обнаружено, что терапевтический помощь в человеческих аллергических заболеваний кожи 7-11, хотя механизм этого эффекта неизвестна. Здесь мы показываем, анализа на эффект триклозана на дегрануляцию тучных клеток. Недавно мы показали, что триклозан сильно влияет на функции клеток мачты 2. В попытке избежать использование органических растворителей, триклозан растворяли непосредственно в водном буфере с высокой температурой и перемешивании, и полученную концентрации подтверждена с помощью УФ-и видимой области спектра (с использованием ε 280 = 4200 л / M / см) 12. Этот протокол имеет потенциал для использования с различными химическими веществами, чтобы определить их воздействие на дегрануляцию тучных клеток, и более широко, их аллергический потенциал.

Introduction

Тучные клетки высоко гранулированный иммунные эффекторные клетки, которые служат ключевыми медиаторами при астме, аллергии, паразиты обороны и канцерогенез 13-16. Они живут почти в каждой ткани васкуляризированной 15, где они безопасно хранить аллергических и воспалительных медиаторов в цитоплазматических гранул до момента активации к дегрануляции. Дегрануляция является экзоцитоз мембраносвязанных гранул, что приводит к выделению фармакологически активных медиаторов, таких как гистамин, триптазы и лейкотриены 15. Этот процесс приводит к инициированию типа я реакции гиперчувствительности, которые являются критическими в монтажной защиту против паразитов, а также инициирование аллергический, астматический, и канцерогенных ответов 15.

Тучные клетки и базофилы выразить FcεRI рецепторов с высоким сродством рецепторы для иммуноглобулина Е (IgE) 17. Воздействие аллергеном или антигеном вызывает агрегации множественного IgE-связанных рецепторов FcεRI 17, и именно с этойо-называемый "сшивание" от IgE-связанного Fc рецепторов, который инициирует процесс дегрануляции: каскад событий фосфорилирования тирозина, активацию фосфолипазы С, отток кальция из внутренних запасов и приток кальция в клетку 18. Этот приток кальция необходимо для дегрануляции, и, кроме того, сигналы гранул сплав с мембраной до возникновения экзоцитоз гранул 15. Экспериментально кальциевого ионофора может быть использован для трансфера кальций непосредственно через клеточную мембрану 19, которая по существу обходит все передачи сигнала шаги перед стадией приток кальция 20, что позволяет для идентификации пути мишени токсикантов как до, либо после кальциевой сигнализации 20.

Дегрануляция могут быть измерены быстро и эффективно, контролируя высвобождение из β-гексозаминидазы в клеточном супернатанте, которая распространяется линейно из гранул вместе с гистамином 6, но ягораздо проще обнаружить с помощью простой фермент-субстрат реакции и микропланшет-ридера для анализа флуоресцентного продукта. Этот планшет анализа, как указано в протоколе раздел основан на надежный метод, первоначально разработанный Naal соавт. 1, который количественно расщепление флуорогенный субстрат 4-метилумбеллиферил-N-ацетил-β-D-глюкозаминид на β- гексозаминидазы. Мы модифицировали анализа для проверки воздействия наркотиков и токсикантов, с триклозан отраженных здесь. Этот метод надежно количественно дегрануляции, является недорогой альтернативой, например, проточной цитометрии методах выявления на основе 21, и имеет потенциал, чтобы оказать себе приятно, чтобы высокопроизводительного скрининга из широкого спектра антиаллергенные препараты, а также иммунотоксические или аллергенных химикатов. Этот последний пункт особенно важен в свете в 2007 году Национальный научно-исследовательский совет доклад "испытания на токсичность в 21-м веке: видение и Stratгии »( http://www.nap.edu/openbook.php?record_id=11970 ), которая выступает за развитие высокой пропускной токсикологии испытания, которые используют культуру клеток сократить использование дорогостоящих традиционных лабораторных животных, таких как мыши. Дегрануляции протокол, разработанный Naal соавт. 1 и модифицирована нами 2, использует RBL-2H3 клеточная линия, которая является широко признанным модель гомологичных человеческих клеток слизистой оболочки мачты или базофилы 3-5. (Методы культивирования RBL-2H3 клетки описаны в Hutchinson и соавт. 22). Этот анализ, вероятно, может быть адаптирована к любой тип мачты прилагается клетки.

Триклозан (TCS) является широким спектром антимикробного, который был использован для более чем 30 лет в больницах, средства личной гигиены, товары народного потребления 23,24. Механизм действия антимикробных характерные для TCS является ингибирование жирных кислот биосинтез, вероятно, путем ингибирования еноил-ацилбелком-носителем редуктазы 25,26. Он находится во всем мире в широком диапазоне потребительских продуктов, таких как гель, лосьон для рук, зубную пасту, жидкость для полоскания рта, а в руке мыло в концентрации до 0,3% или 10 мМ 24. Широкое применение TCS привело к обнаружению уровней у человека 27-29 и в реках и ручьях 30. Исследование, проведенное Allmyr соавт. Показали, что 27 TCS и его метаболиты присутствуют как в плазме, и молоко от кормящих матерей. Важно отметить, что TCS легко впитывается в кожу, 31-37. Queckenberg соавт. 37 найдены ~ 10% поглощение ~ 70 мМ крем TCS в человеческую кожу в течение 12 ч, в результате чего в значительной концентрации в коже, где тучные клетки находятся.

TCS было показано в клинических условиях для управления человеческой аллергических заболеваний кожи 7-11, но механизм, посредством которого TCS уменьшает аллергические заболевания кожи была неизвестна 38. Использование флуоресцентных detaile анализа микропланшетD В этом видео, мы недавно показали, что TCS, при таких низких концентрациях, как 2 мкм, что значительно ослабляет мачту функции клеток и дегрануляцию, обеспечивая потенциальное объяснение этих клинических данных 2. В дополнение к предоставлению объяснение этих клинических данных, наши данные в Палмер и др.. 2 показывают, что TCS цели сигнальных молекул вниз по течению притока кальция. Из-за важности кальциевой сигнализации во многих иммунологических и других биологических процессов, TCS потенциально может оказать неблагоприятное воздействие на широкий спектр необходимых биологических процессов. В самом деле, Udoji соавт. Показали, что 39 TCS подавляет человека природных клеток-киллеров литической активности, еще одной важной врожденной иммунной функции.

За свой ​​потенциал в качестве терапевтической помощи при аллергических заболеваний кожи (или, наоборот, как иммунотоксикантом), TCS также может быть эндокринные нарушающими 40-49. Таким образом, четкой процедуры по подготовке этого химического вещества в растворе яы, представляющие интерес для токсикологов. Поскольку TCS представляет собой небольшую молекулу гидрофобные органические транспортные средства часто используются, чтобы сделать его более растворимы в воде. В большинстве исследований токсичности где TCS была протестирована, препарат участвует растворения в воде с помощью органического растворителя, такого как этанол, ацетон или масло 2,50,51. Однако зачастую этих растворителей являются биологически активными сами, что усложняет интерпретацию химический анализ данных 51. На самом деле, в соответствии с Rufli соавт. 52 и др. 53, рекомендуется, чтобы тестируемые растворы для водных экспериментов токсичности готовятся с использованием физических методов над химическими методами, в связи с возможным химических растворителей для создания токсичности артефактов. Ранее нами было показано, что TCS растворенные в 0,24% этанол / вода (об / об) и обрабатывали ультразвуком в течение 30 мин гасит RBL дегрануляцию тучных клеток 2. Этанол при более высоких концентрациях, чем 0,24%, как было показано ослабить мачта деградацией клеткиnulation 54,55-примеры потенциально смешанного воздействия органических растворителей на исследования токсичности.

Это не только важно учитывать влияние растворителей на организм или клетки, используемые для исследования, но и важно для мониторинга влияния растворителя на химический тест сам. Например, скоро и соавт. 51 обнаружили, что растворение TCS в полиэтиленгликоле (обычно находится в зубные пасты и жидкости для полоскания рта) ослаблены антибактериальными и против зубного налета эффектов у здоровых женщин женщины в то время как растворение в маслах вызванный полной потере функции. Таким образом, способность различных растворителей модулировать токсических веществ и наркотиков, включая TCS, эффекты должны быть рассмотрены в тесте конструкции. Использование масла или вкусовые добавки могут мешать эффекты TCS в различных продуктах 50,51.

В попытке устранить необходимость в использовании органических растворителей, мы улучшили наш способ растворения TCS 2, устраняя использование органического зольвыразить. В настоящем Протоколе, мы растворяем TCS гранулы непосредственно в водный буферный раствор с выделением тепла (≤ 50 ° C), а затем проверить концентрацию этого запаса TCS УФ-и видимой области спектра. Эти усовершенствования возможно потому, TCS растворим в воде до 40 мкМ ( http://www.epa.gov/oppsrrd1/REDs/2340red.pdf ), и было показано, что устойчивость к разложению при нагревании до 50 ° C ( HTTP: / oehha.ca.gov/prop65/public_meetings/052909coms/triclosan/ciba3.pdf ) 56,57. У нас также есть дополнительное преимущество УФ-и видимой области спектра, а также TCS, как известно, сильно поглощают при 280 нм с 58 коэффициент молярной экстинкции 4200 л / моль / см 12.

Этот протокол обеспечивает простой, но эффективный способ растворить TCS гранул в буфер без помощи органического растворителя, в том числе низкой стоимости и быстрой проверкиконцентрации, и описывает мощную флуоресцентного исследования микропланшет для мониторинга химического воздействия на дегрануляцию тучных клеток.

Protocol

Отметим, что все буфера рецептов включены в таблицу в конце текста протокола. День 1: 1. Подготовка клетки План из 96-луночных схема установки пластины, центрирование образцов на макете, чтобы избежать краевых эффектов. Выделить трех повторност?…

Representative Results

При нагревании до 50 ° С в течение 90 мин, УФ-и видимой области спектра поглощения для TCS дает сильный, гладкую кривую между ~ 260 и 300 нм, с пиком при 280 нм, как показано на рисунке 1. УФ-и видимой области спектра, таким образом, важным инструментом, который может быть использован для вычисления кон…

Discussion

В 2004 году Naal соавт. 1 разработали мачты биосенсоров ячейки для высокой пропускной тестирование дегрануляции. Это надежный анализ, который мы адаптировали для нашего исследования TCS и подробно описанная в этом видео. До Naal соавт. 1 анализе дегрануляцию тучных клеток были обычно…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

НМ и RHK поддерживаются Высшая школа UMaine в биомедицинской науки и техники (GSBSE); RHK была также поддержана Мэн Сельскохозяйственная и лесная опытная станция. Дополнительное финансирование было предоставлено Национальным Институтом Общих Медицинских Наук (NIH P20-GM103423), Мэн Сельскохозяйственная и лесная опытная станция (номер гранта ME08004-10, ОКГ), Университет штата Мэн ADVANCE Rising Tide центр (NSF грант № 1008498) и исследовательский грант стартер в фармакологии / токсикологии от PhRMA Foundation (ОКГ). Мы благодарим д-ра. Дэвид и Барбара Holowka Baird к антигену и клеток. Мы благодарны Хина Хашми, Алехандро Велес, и Андрей Абовяна за помощь в оборудовании и заказах. Это Мэн Сельскохозяйственная и лесная опытная станция номер публикации 3311.

Materials

RBL-2H3 Cells

ATCC

CRL-2256

The cells we used were a gift, but they are also available from ATCC

Triclosan/Irgasan

Sigma

72779

CAS# 3380-34-5

Should be stored in a low humidity environment

Trypsin

Gibco

25300-054

CAS# 3380-34-5

EMEM

Lonza

12-611F

Fetal Bovine Serum

Atlanta Biologicals

S11150

Gentamycin Sulfate

Lonza Biological Sciences

17-518

Albumin, Bovine Serum

Calbiochem

12659

CAS# 9048-46-8

Surfact-Amps X-100 (Triton X-100; 10% solution)

Pierce

28314

CAS# 9002-93-1

HEPES

J.T Baker

4153-01

CAS# 75277-39-3

Magnesium Chloride

VWR

BDH0244-500G

CAS# 7791-18-6

D-(+)-Glucose

Biomedicals

152527

CAS# 50-99-7

Potassium Chloride Crystal

J.T Baker

3046-01

CAS# 7447-40-7

Calcium chloride dihyrdate

Acros Organics

207780010

CAS# 10035-04-8

Glycine

Sigma

G8898

CAS# 56-40-6

4-Methylumbelliferyl-N-acetyl-β-D-glucosaminide (4-MU)

EMD Biosciences

474502-250MG

CAS # 37067-30-4

Wrap in foil – is light-sensitive

Anti-DNP Mouse IgE

Sigma

D8406

Reagent has concentration of 1 mg/ml. Aliquot 25 µl of reagent into separate microcentrifuge tubes and Parafilm. Store aliquots at -20 °C that are not being used and store aliquot that is being used at 2-8 °C for no longer than 1 month.

DNP-BSA

Gift from Dr. David Holowka and Dr. Barbara Baird, Cornell University

Suggest: life technologies DNP-BSA catalog# A23018

Calcium Ionophore A23187

Sigma

C75-22-1mg

Ionophore was made from a powder by adding 400 µl of fresh 100% DMSO into the ionophore vial and is kept at -20 °C

Note: we have used the ionophore past its 3 month expiration date successfully

DMSO

Sigma

D2650

CAS# 67-68-5

Acetic Acid

VWR

BDH3094-2

CAS# 64-19-7

Anhydrous Sodium Carbonate

Sigma

222321

CAS# 497-19-8

Sodium Chloride

Sigma

71376

CAS# 7647-14-5

Hydrochloric Acid

VWR

BDH3026

CAS# 7647-01-0

Reference Buffer, pH 7

VWR

BDH5046

Reference Buffer, pH 10

VWR

BDH5072

Reference Buffer, pH 4

VWR

BDH5018

pH electrode storage solution

VWR

14002-828

Equipment:

Material Name

Company

Catalogue Number

Comments (optional)

DU 7500 Spectrophotometer

Beckmann

No longer sold

Synergy 2 plate reader

Uses Gen5 Microplate Data Collection and Analysis Software

BioTek

Module S

Hematocytometer

Hausser Scientific

3110

7 x 7 CER HOT/STIR 120 V

Combination hot plate/magnetic stir plate

VWR

97042-634

Centrifuge

Eppendorf

5430

Tissue culture water bath

VWR

Model# 89032-206

Tissue Culture biological safety cabinet

SafeGARD (TC hood)

The Baker Company

Model# SG403A-HE

Tissue culture incubator

ThermoScientific

Model# 3598

Pipetman

VWR

Range: P2-P1000

Balance

Mettler Toledo

Model# AG204

pH meter

Symphony/VWR

Model# SB70P

Pipet-Aid

Drummond Scientific

4-000-100

Combitip dispenser

Eppendorf

4981 000.019

Recipes:

Name

Recipe

Notes

Acetate Buffer, pH 4.4

  • Make 0.12 M acetic acid and titrate to pH 4.4 with 10 N NaOH.
  • This is 5.3 ml glacial acetic acid into 1 L of MilliQ water:

(1 L)*(0.12 mol/L)*(60 g/mol)*(ml/1.37 g) = 5.3 ml because density of glacial is 1.37 g/ml

Sterile Filter into autoclaved glass bottle

Substrate (4-MU)

  • Sigma M-2133, 250 mg, C18H21NO8, FW 379.4 CAS (37067-30-4)
  • Store in -20°C
  • Stock: 0.12 M in DMSO (46 mg in 1 ml DMSO), warm to 37 °C, vortex, sonicate 10 min. in water-bath sonicator with warm water, vortex again

For each experiment, make fresh solution of substrate in acetate buffer (100x dilution), for final concentration of 1.2 mM in acetate buffer

Glycine Carbonate Buffer, pH 10

  • 26.7 g glycine
  • 47.1 g anhydrous sodium carbonate
  • Add deionized water for 1 L, and adjust pH to 10

Sterile filter into autoclaved glass bottle

Tyrodes (2 L), pH 7.4

  • 135 mM NaCl: 15.78 g (or 270 ml of 1 M)
  • 5 mM KCl: 10 ml of 1 M stock
  • 1.8 mM CaCl2: 7.20 ml of 0.5 M stock
  • 1 mM MgCl2: 4.00 ml of 0.5 M stock
  • 5.6 mM glucose: 2.02 g (11.2 ml of 1 M)
  • 20 mM HEPES: 40 ml of 1 M stock
  • Using concentrated HCl pH from ~9.7-7.4

Sterile filter into autoclaved glass bottle

RBL Cell Media

  • Thaw fetal bovine serum (FBS, stored at -20 °C) for about 4 hours in 37 °C water bath
  • Follow standard sterile technique
  • Get out 1 L minimum essential medium (MEM) with L-glutamine (with Earle’s salts)
  • Pour off some MEM to have 800 ml MEM, add 200 mL warm FBS
  • Add 1 ml gentamicin sulfate antibiotic to 1 L of media with sterile pipette
  • Only use media bottles that have been autoclaved and marked for cell culture use only.

Sterile filter (0.2 mm) into autoclaved glass bottle

Plastic material used:

Material Name

Company

Catalogue Number

Type of Plastic

200 µl Disposable sterile pipet tips with graduations in 96 rack

VWR

53509-009

polypropylene

1,000 µl Sterile aerosol pipet tips with HighRecovery

VWR

89003-420

polyethylene

10 µl micro tip low binding sterile

VWR

14217-704

polypropylene

Disposable/conical Microcentrifuge tubes for high G-force

VWR

20170-038

polypropylene

Disposable/graduated/conical/sterile 50 ml centrifuge tubes with screw caps

VWR

21008-178

polypropylene

Disposable/graduated/conical/sterile 15 ml centrifuge tubes with screw caps

VWR

21008-103

polypropylene

CELLSTAR Tissue Culture Treated T-25 Flask w/ Filter Cap

Greiner Bio One

690175

polystyrene

CELLSTAR Tissue Culture Treated T-75 Flask w/ Filter Cap

Greiner Bio One

658175

polystyrene

CELLSTAR 10 ml Paper/Plastic Wrapped Serological Pipette

Greiner Bio One

607180

polystyrene

CELLSTAR 2 ml Paper/Plastic Wrapped Serological Pipette

Greiner Bio One

710180

polystyrene

CELLSTAR 5 ml Paper/Plastic Wrapped Serological Pipette

Greiner Bio One

606180

polystyrene

CELLSTAR 25 ml Paper /Plastic Wrapped Serological Pipette

Greiner Bio One

760180

polystyrene

1 cm cuvettes

N/A

N/A

polystyrene

CELLSTAR, 96W Microplate, Tissue-Culture Treated, Black, with Lid

96-well Plate

Greiner Bio One

655086

polystyrene

Combitips

Eppendorf

022266501

Polypropylene/

polyethylene

Riferimenti

  1. Naal, R., Tabb, J., Holowka, D., Baird, B. In situ measurement of degranulation as a biosensor based on RBL-2H3 mast cells. Biosens. Bioelectron. 20, 791-796 (2004).
  2. Palmer, R. K., et al. Antibacterial agent triclosan suppresses RBL-2H3 mast cell function. Toxicol. Appl. Pharmacol. 258, 99-108 (2012).
  3. Fewtrell, C., Kessler, A., Metzger, H. Comparative aspects of secretion from tumor and normal mast cells. Adv. Inflam. Res. 1, 205-221 (1979).
  4. Metzger, H., et al. The receptor with high-affinity for immunoglobulin-E. Annu. Rev. Immunol. 4, 419-470 (1986).
  5. Seldin, D. C., et al. Homology of the rat basophilic leukemia-cell and the rat mucosal mast-cell. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 82, 3871-3875 (1985).
  6. Schwartz, L. B., Austen, K. F., Wasserman, S. I. Immunological release of beta-hexosaminidase and beta-glucuronidase from purified rat serosal mast-cells. J. Immunol. 123, 1445-1450 (1979).
  7. Kjaerheim, V., Barkvoll, P., Waaler, S. M., Rolla, G. Triclosan inhibits histamine-induced inflammation in human skin. J. Clin. Periodontol. 22, 423-426 (1995).
  8. Barkvoll, P., Rolla, G. Triclosan reduces the clinical symptoms of the allergic patch test reaction (APR) elicited with 1-percent nickel sulfate in sensitized patients. J. Clin. Periodontol. 22, 485-487 (1995).
  9. Tan, W. P., Suresh, S., Tey, H. L., Chiam, L. Y., Goon, A. T. A randomized double-blind controlled trial to compare a triclosan-containing emollient with vehicle for the treatment of atopic dermatitis. Clin. Exp. Dermatol. 35, e109-e112 (2010).
  10. Sporik, R., Kemp, A. S. Topical triclosan treatment of atopic dermatitis. J. Allergy Clin. Immunol. 99, 861 (1997).
  11. Wohlrab, J., Jost, G., Abeck, D. Antiseptic efficacy of a low-dosed topical triclosan/chlorhexidine combination therapy in atopic dermatitis. Skin Pharmacol. Physiol. 20, 71-76 (2007).
  12. Wong-Wah-Chung, P., Rafqah, S., Voyard, G., Sarakha, M. Photochemical behaviour of triclosan in aqueous solutions: Kinetic and analytical studies. J. Photochem. Photobiol. A Chem. 191, 201-208 (2007).
  13. Blank, U., Essig, M., Scandiuzzi, L., Benhamou, M., Kanamaru, Y. Mast cells and inflammatory kidney disease. Immunol. Rev. 217, 79-95 (2007).
  14. Gri, G., et al. Mast cell: an emerging partner in immune interaction. Frontiers in Immunology. 3, (2012).
  15. Kuby, J. . Immunology. , (1997).
  16. Farrell, D. J., et al. Intrahepatic mast-cells in chronic liver-diseases. Hepatology. 22, 1175-1181 (1995).
  17. Cookson, W. The alliance of genes and environment in asthma and allergy. Nature. 402, 5-11 (1999).
  18. Ferris, C. D., Huganir, R. L., Supattapone, S., Snyder, S. H. Purified inositol 1,4,5-triphosphate receptor mediates calcium flux in reconstituted lipid vesicles. Nature. 342, 87-89 (1989).
  19. Foreman, J. C., Mongar, J. L., Gomperts, B. D. Calcium ionospheres and movement of calcium ions following physiological stimulus to a secretory process. Nature. 245, 249-251 (1973).
  20. Siraganian, R. P., Kulczycki, A., Mendoza, G., Metzger, H. Ionophore A-23187 induced histamine-release from mast-cells and rat basiphil leukemia (RBL-1) cells. J. Immunol. 115, 1599-1602 (1975).
  21. Demo, S. D., et al. Quantitative measurement of mast cell degranulation using a novel flow cytometric annexin-V binding assay. Cytometry. 36, 340-348 (1999).
  22. Hutchinson, L. M., et al. Inorganic arsenite inhibits IgE receptor-mediated degranulation of mast cells. J. Appl. Toxicol. 31, 231-241 (2011).
  23. Dann, A. B., Hontela, A. Triclosan: environmental exposure, toxicity and mechanisms of action. J. Appl. Toxicol. 31, 285-311 (2011).
  24. Jones, R. D., Jampani, H. B., Newman, J. L., Lee, A. S. Triclosan: A review of effectiveness and safety in health care settings. Am. J. Infect. Control. 28, 184-196 (2000).
  25. Levy, C. W., et al. Molecular basis of triclosan activity. Nature. 398, 383-384 (1999).
  26. McMurry, L. M., Oethinger, M., Levy, S. B. Triclosan targets lipid synthesis. Nature. 394, 531-532 (1998).
  27. Allmyr, M., Adolfsson-Erici, M., McLachlan, M. S., Sandborgh-Englund, G. Triclosan in plasma and milk from Swedish nursing mothers and their exposure via personal care products. Sci. Total Environ. 372, 87-93 (2006).
  28. Allmyr, M., et al. The influence of age and gender on triclosan concentrations in Australian human blood serum. Sci. Total Environ. 393, 162-167 (2008).
  29. Geens, T., Neels, H., Covaci, A. Distribution of bisphenol-A, triclosan and n-nonylphenol in human adipose tissue, liver and brain. Chemosphere. 87, 796-802 (2012).
  30. Kolpin, D. W., et al. Pharmaceuticals, hormones, and other organic wastewater contaminants in US streams, 1999-2000: A national reconnaissance. Environ. Sci. Technol. 36, 1202-1211 (2002).
  31. Black, J. G., Howes, D. Percutaneous absorption of triclosan from toilet preparations. J. Soc. Cosmet. Chem. 26, 205-215 (1975).
  32. Black, J. G., Howes, D., Rutherford, T. Percutaneous absorption and metabolism of Irgasan DP300. Toxicology. 3, 33-47 (1975).
  33. Kanetoshi, A., et al. Acute toxicity, percutaneous-absorption and effects on hepatic mixed-function oxidase activities of 2,4,4′-trichloro-2′-hydroxydiphenyl ether (Irgasan(R) DP300) and its chlorinated derivatives. Arch. Environ. Contam. Toxicol. 23, 91-98 (1992).
  34. Sandborgh-Englund, G., Adolfsson-Eric, M., Odham, G., Ekstrand, J. Pharmacokinetics of Triclosan in man. J. Dental Res. 81, 0937 (2002).
  35. Sandborgh-Englund, G., Adolfsson-Erici, M., Odham, G., Ekstrand, J. Pharmacokinetics of triclosan following oral ingestion in humans. J. Toxicol. Environ. Health A. 69, 1861-1873 (2006).
  36. Lin, Y. J. Buccal absorption of triclosan following topical mouthrinse application. Am. J. Dent. 13, 215-217 (2000).
  37. Queckenberg, C., et al. Safety of Triclosan after Dermal Administration. Antimicrob. Agents Chemother. 54, 570-572 (2010).
  38. Breneman, D. L., Hanifin, J. M., Berge, C. A., Keswick, B. H., Neumann, P. B. The effect of antibacterial soap with 1.5% triclocarban on Staphylococcus aureus in patients with atopic dermatitis. Cutis. 66, 296-300 (2000).
  39. Udoji, F., Martin, T., Etherton, R., Whalen, M. M. Immunosuppressive effects of triclosan, nonylphenol, and DDT on human natural killer cells in vitro. J. Immunotoxicol. 7, 205-212 (2010).
  40. Ahn, K. C., et al. In vitro biologic activities of the antimicrobials triclocarban, its analogs, and triclosan in bioassay screens: Receptor-based bioassay screens. Environ. Health Perspect. 116, 1203-1210 (2008).
  41. Foran, C. M., Bennett, E. R., Benson, W. H. Developmental evaluation of a potential nonsteroidal estrogen: triclosan. Mar. Environ. Res. 50, 153-156 (2000).
  42. Gee, R. H., Charles, A., Taylor, N., Darbre, P. D. Oestrogenic and androgenic activity of triclosan in breast cancer cells. J. Appl. Toxicol. 28, 78-91 (2008).
  43. Helbing, C. C., van Aggelen, G., Veldhoen, N. Triclosan Affects Thyroid Hormone-Dependent Metamorphosis in Anurans. Toxicol. Sci. 119, 417-418 (2011).
  44. Ishibashi, H., et al. Effects of triclosan on the early life stages and reproduction of medaka Oryzias latipes and induction of hepatic vitellogenin. Aquat. Toxicol. 67, 167-179 (2004).
  45. Kumar, V., Chakraborty, A., Kural, M. R., Roy, P. Alteration of testicular steroidogenesis and histopathology of reproductive system in male rats treated with triclosan. Reprod. Toxicol. 27, 177-185 (2009).
  46. Matsumura, N., et al. Effects of nonylphenol and triclosan on production of plasma vitellogenin and testosterone in male South African clawed frogs (Xenopus laevis. Biol. Pharm. Bull. 28, 1748-1751 (2005).
  47. Veldhoen, N., et al. The bactericidal agent triclosan modulates thyroid hormone-associated gene expression and disrupts postembryonic anuran development. Aquat. Toxicol. 80, 217-227 (2006).
  48. Raut, S. A., Angus, R. A. Triclosan has endocrine-disrupting effects in male western mosquitofish, Gamusia affins. Environ. Toxicol. Chem. 29, 1287-1291 (2010).
  49. Park, H. G., Yeo, M. K. The toxicity of triclosan, bisphenol A, bisphenol A diglycidyl ether to the regeneration of cnidarian, Hydra magnipapillata. Mol. Cell. Toxicol. 8, 209-216 (2012).
  50. Vandhanaa, S., Deepa, P. R., Aparna, G., Jayanthi, U., Krishnakumar, S. Evaluation of suitable solvents for testing the anti-proliferative activity of triclosan – a hydrophobic drug in cell culture. Indian J. Biochem. Biophys. 47, 166-171 (2010).
  51. Skaare, A. B., Kjaerheim, V., Barkvoll, P., Rolla, G. Does the nature of the solvent affect the anti-inflammatory capacity of triclosan? An experimental study. J. Clin. Periodontol. 24, 124-128 (1997).
  52. Rufli, H. Introduction of moribund category to OECD fish acute test and its effect on suffering and LC50 values. Environ. Toxicol. Chem. 31, 1107-1112 (2012).
  53. Hutchinson, T. H., Shillabeer, N., Winter, M. J., Pickford, D. B. Acute and chronic effects of carrier solvents in aquatic organisms: A critical review. Aquat. Toxicol. 76, 69-92 (2006).
  54. Toivari, M., Maki, T., Suutarla, S., Eklund, K. K. Ethanol inhibits IgE-induced degranulation and cytokine production in cultured mouse and human mast cells. Life Sci. 67 (00), 2795-2806 (2000).
  55. Kennedy, R. H., Pelletier, J. H., Tupper, E. J., Hutchinson, L. M., Gosse, J. A. Estrogen mimetic 4-tert-octylphenol enhances IgE-mediated degranulation of RBL-2H3 mast cells. J. Toxicol. Environ. Health A. 75, 1451-1455 (2012).
  56. Fort, D. J., et al. Triclosan and Thyroid-Mediated Metamorphosis in Anurans: Differentiating Growth Effects from Thyroid-Driven Metamorphosis in Xenopus laevis. Toxicol. Sci. 121, 292-302 (2011).
  57. Fiori, J., Pinto, J. C., et al. Macromolecular Symposia. in Brazilian Polymer Congress. 299-300, 26-33 (2011).
  58. Mezcua, M., et al. Evidence of 2,7/2,8-dibenzodichloro-p-dioxin as a photodegradation product of triclosan in water and wastewater samples. Anal. Chim. Acta. 524, 241-247 (2004).
  59. Soto, E. O., Pecht, I. A monoclonal-antibody that inhibits secretion from rat basophilic leukemia-cells and binds to a novel membrane component. Journal of Immunology. 141, 4324-4332 (1988).
  60. Pierini, L., Harris, N. T., Holowka, D., Baird, B. Evidence supporting a role for microfilaments in regulating the coupling between poorly dissociable IgE-Fc epsilon RI aggregates and downstream signaling pathways. Biochimica. 36, 7447-7456 (1997).
  61. Aketani, S., Teshima, R., Umezawa, Y., Sawada, J. Correlation between cytosolic calcium concentration and degranulation in RBL-2H3 cells in the presence of various concentrations of antigen-specific IgEs. Immunol. Lett. 75, 185-189 (2001).
  62. Koo, N., Kim, K. M. Distinct effects on M-2-type pyruvate kinase are involved in the dimethylsulfoxide-induced modulation of cellular proliferation and degranulation of mast cells. Arch. Pharmacal Res. 32, 1637-1642 (2009).
  63. Senyshyn, J., Baumgartner, R. A., Beaven, M. A. Quercetin sensitizes RBL-2H3 cells to polybasic mast cell secretagogues through increased expression of Gi GTP-binding proteins linked to a phospholipase C signaling pathway. J. Immunol. 160, 5136-5144 (1998).
  64. Yang, C. Z., Yaniger, S. I., Jordan, V. C., Klein, D. J., Bittner, G. D. Most Plastic Products Release Estrogenic Chemicals: A Potential Health Problem that Can Be Solved. Environ. Health Perspect. 119, 989-996 (2011).
check_url/it/50671?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Weatherly, L. M., Kennedy, R. H., Shim, J., Gosse, J. A. A Microplate Assay to Assess Chemical Effects on RBL-2H3 Mast Cell Degranulation: Effects of Triclosan without Use of an Organic Solvent. J. Vis. Exp. (81), e50671, doi:10.3791/50671 (2013).

View Video