Summary

Identificazione di inibitori EGFR e RAS utilizzando Caenorhabditis elegans

Published: October 05, 2020
doi:

Summary

Il nematode geneticamente trattabile Caenorhabditis elegans può essere utilizzato come modello semplice ed economico per la scoperta di farmaci. Qui è descritto un protocollo per identificare terapie antitumorali che inibiscono la segnalazione a valle delle proteine RAS ed EGFR.

Abstract

I cambiamenti nella localizzazione della membrana plasmatica del recettore del fattore di crescita epidermico (EGFR) e del suo effettore a valle RAS sono stati implicati in diverse malattie tra cui il cancro. Il nematode C. elegans a vita libera possiede una cascata di segnali EGFR-RAS-ERK MAP evolutivamente conservata e funzionalmente conservata che è centrale per lo sviluppo della vulva. Le mutazioni di guadagno di funzione nell’omologo RAS LET-60 e nell’omologo EGFR LET-23 inducono la generazione di pseudovulva ectopica non funzionale visibile lungo la parete corporea ventrale di questi vermi. In precedenza, il fenotipo multivulvale (Muv) in questi vermi ha dimostrato di essere inibito da piccole molecole chimiche. Qui descriviamo un protocollo per l’utilizzo del worm in un test a base liquida per identificare gli inibitori che aboliscono le attività delle proteine EGFR e RAS. Usando questo test, mostriamo che la R-fendilina, un inibitore indiretto di K-RAS, sopprime il fenotipo Muv espresso nei vermi mutanti let-60(n1046) e let-23(sa62). Il test è semplice, poco costoso, non richiede molto tempo per l’installazione e può essere utilizzato come piattaforma iniziale per la scoperta di terapie antitumorali.

Introduction

Le vie cellulari che regolano gli eventi di sviluppo all’interno degli organismi sono altamente conservate tra tutti i metazoi. Una di queste vie è la cascata di segnalazione della proteina chinasi attivata dal mitogeno EGFR-RAS-ERK (MAPK) che è una via critica che governa la proliferazione cellulare, la differenziazione, la migrazione e la sopravvivenza1,2. I difetti in questa via di segnalazione possono portare a stati patologici o patologici come il cancro. Il recettore del fattore di crescita epidermico (EGFR) ha dimostrato di essere altamente espresso nei tumori umani, tra cui il 50% dei carcinomi a cellule squamose orali, e contribuisce allo sviluppo di tumori maligni3,4,5. Mentre le mutazioni nelle tre isoforme RAS H-, K- e N-RAS sono i principali driver per la trasformazione maligna in più tumori umani. Tra queste tre isoforme RAS, le mutazioni oncogeniche in K-RAS sono più diffuse6,7,8. Affinché EGFR e RAS funzionino, devono localizzarsi sulla membrana plasmatica (PM). Prevenire la localizzazione di queste molecole al PM può abrogare completamente l’attività biologica di questa via di segnale9,10. Quindi l’inibizione della localizzazione di queste proteine al PM è una strategia terapeutica per bloccare la segnalazione a valle e i conseguenti esiti avversi. Utilizzando un test di screening ad alto contenuto, la fendilina, un bloccante dei canali del calcio di tipo L, è stata identificata come un inibitore dell’attività K-RAS11. La nanoclustering di K-RAS al foglietto interno del PM è significativamente ridotta in presenza di fendilina. Inoltre, K-RAS viene ridistribuito dalla membrana plasmatica al reticolo endoplasmatico (ER), all’apparato di Golgi, agli endosomi e al citosol. Ancora più importante, la proliferazione delle linee cellulari tumorali pancreatiche, del colon, del polmone e dell’endometrio che esprimono il mutante oncogenico K-RAS è bloccata dall’inibizione della segnalazione a valle da parte della fendilina11. Questi dati suggeriscono che la fendilina funziona come una specifica terapia antitumorale K-RAS che causa l’errata localizzazione della proteina RAS al PM.

Il nematode Caenorhabditis elegans è stato ampiamente studiato nel contesto dello sviluppo. Molte delle vie del segnale che governano lo sviluppo nel worm sono evolutive e funzionalmente conservate. Ad esempio, l’attivazione mediata da EGFR di RAS e la successiva attivazione della cascata di segnali ERK MAPK sono conservate nel worm12. La cascata è rappresentata dalle seguenti proteine: LET-23 > LET-60 > LIN-45 > MEK-2 > MPK-1. LET-60 è omologo a RAS, mentre LET-23 è omologo a EGFR. Nel verme, questo percorso regola lo sviluppo della vulva13. La vulva è un’apertura epiteliale sulla parete del corpo ventrale del verme che consente di depostare le uova fecondate. La formazione della vulva nel worm dipende dall’esposizione delle cellule precursori vulvari (VPC) a un gradiente di attivazione della cascata di segnali EGFR-RAS-MAPK. Durante il normale sviluppo, i VPC prossimali ricevono forti segnali dalle cellule di ancoraggio gonadiche per differenziarsi in destini cellulari di 1° e 2° che danno origine a una vulva funzionale12. Mentre i VPC distali si differenziano in destini cellulari 3° che si fondono con il sincizio ipodermico e non formano la vulva a causa della segnalazione impoverita. In assenza di segnalazione, tutte le VPC si differenziano in destini cellulari 3° con conseguente formazione di nessuna vulva. Tuttavia, la segnalazione costitutiva porta alla formazione di una o più vulve non funzionali a causa dell’induzione di tutti i VPC ad assumere destini cellulari di 1° e 2°.

Mutazioni che causano un’induzione vulvale difettosa o eccessiva sono state identificate per molti dei geni che codificano per le proteine che rappresentano questa via. L’induzione vulvale difettosa provoca un fenotipo vulvaless (Vul), mentre un’eccessiva induzione vulvare si traduce in un fenotipo multivulva (Muv) che è rappresentato dallo sviluppo di numerose pseudovulve ectopiche non funzionali in tutta la parete del corpo ventrale. Il fenotipo Muv espresso dal ceppo let-60(n1046) è dovuto ad una mutazione gain of function in RAS, mentre nel ceppo let-23(sa62) è dovuto ad una mutazione attivante in EGFR14,15. Il fenotipo Muv forte in questi ceppi mutanti ha dimostrato di essere perturbato da interventi farmacologici come dimostrato dal trattamento dei vermi let-60(n1046) con l’inibitore MEK-1 U012616,17. È interessante notare che abbiamo dimostrato che R-fendilina e inibitori che influenzano il metabolismo della sfingomielina sopprimono il fenotipo Muv nel verme18. Per dimostrare che questi inibitori bloccano la segnalazione let-60 a livello di RAS, il ceppo nullo lin-1 è stato utilizzato17. Lin-1 è un fattore di trascrizione inibitorio simile a Ets che funziona come un repressore nello sviluppo della vulva19. La forte inversione del fenotipo Muv nei vermi let-60(n1046) e nessun effetto sui vermi nulli lin-1 suggeriscono che queste inibizioni si verificano a livello di RAS.

In questo protocollo, dimostriamo l’uso di C. elegans come modello per identificare inibitori delle proteine RAS ed EGFR. Utilizzando un test a base liquida, dimostriamo gli effetti inibitori della R-fendilina sopprimendo i fenotipi Muv nei ceppi mutanti let-60(n1046) e let-23(sa62) di C. elegans. Questo test convalida l’uso di C. elegans come strumento nella fase iniziale della scoperta di farmaci per terapie antitumorali.

Protocol

1. Preparazione della piastra del mezzo di crescita dei nematodi (NGM) Aggiungere 2,5 g di peptone e 3 g di NaCl a 970 ml di acqua deionizzata contenuta in un matraccio Erlenmeyer da 2 L. Mescolare il contenuto usando una barra di agitazione magnetica. Successivamente, aggiungere 20 g di agar al matraccio. Autoclave il contenuto del matraccio a 121 °C e una pressione di 15 lb/in2 per 30 min. Dopo la sterilizzazione, posizionare il matraccio su una piastra di agitazione e lasciare raffreddare il mezz…

Representative Results

Per prima cosa dimostriamo che la R-fendilina è in grado di sopprimere il fenotipo Muv nel ceppo mutante let-60 (n1046) rispetto ai vermi trattati con DMSO. I nostri dati mostrano che la R-fendilina è in grado di bloccare il fenotipo Muv nel let-60(n1046) in modo dose-dipendente (Figura 2A,B). Tuttavia, la non inversione del fenotipo Muv è stata osservata nel ceppo mutante nullo lin-1 in risposta all’aumento delle concentrazioni di R-fendilina (…

Discussion

I saggi che descriviamo usando il worm sono semplici e poco costosi per identificare gli inibitori della funzione EGFR e RAS. C. elegans è un modello interessante per la scoperta di farmaci perché è facile da coltivare in laboratorio a causa del breve ciclo di vita (3 giorni a 20 ° C) e della capacità di generare un gran numero di larve. Ancora più importante, il percorso EGFR-RAS-ERK MAPK è evolutivamente e funzionalmente conservato con mammiferi che forniscono un sistema geneticamente trattabile per ana…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Ringraziamo il Dr. Swathi Arur (MD Anderson Cancer Center) per aver fornito il let-60 (n1046). Ringraziamo anche il Dr. David Reiner (Texas A & M Health Science Center Institute of Biosciences & Technology di Houston) per il ceppo lin-1. Infine, ringraziamo la dottoressa Danielle Garsin e il suo laboratorio (The University of Texas, McGovern Medical School) per aver fornito alcuni dei reagenti. Alcuni ceppi di worm sono stati forniti dal CGC, che è finanziato dal NIH Office of Research Infrastructure Programs (P40 OD010440). Questa ricerca è stata sostenuta dalla sovvenzione RP200047 del Cancer Prevention and Research Institute of Texas (CPRIT) a JF Hancock.

Materials

Media and chemicals
Agarose  Millipore Sigma  A9539-50G
Bacto Peptone  Fisher Scientific DF0118-17-0
BD Difco Agar  Fisher Scientific DF0145-17-0
BD Difco LB Broth Fisher Scientific DF0446-17-3
Calcium Chloride Fisher Scientific BP510-500
Cholesterol Fisher Scientific ICN10138201
Magnesium Sulfate Fisher Scientific BP213-1
Nystatin Acros organics AC455500050
Potassium Phosphate Dibasic Fisher Scientific BP363-500
Potassium pPhosphate Monobasic Fisher Scientific BP362-500
R-Fendiline Commercially Synthesized (Pharmaceutical grade)
Sodium Azide Millipore Sigma  S2002-25G
Sodium chloride  Fisher Scientific BP358-1
Sodium Hydroxide Fisher Scientific SS266-1
8.25% Sodium Hypochlorite  Bleach
Sodium Phosphate Dibasic  Fisher Scientific BP332-500
Streptomycin Sulfate  Fisher Scientific BP910-50
(−)-Tetramisole Hydrochloride Millipore Sigma  L9756
UO126 (MEK inhibitor) Millipore Sigma  19-147
Consumables 
15mL Conical Sterile Polypropylene Centrifuge Tubes  Fisher Scientific 12-565-269
50mL Conical Sterile Polypropylene Centrifuge Tubes Fisher Scientific 12-565-271
Disposable Polystyrene Serological Pipettes 10mL Fisher Scientific 07-200-574
Disposable Polystyrene Serological Pipettes 25mL Fisher Scientific 07-200-575
No. 1.5  18 mm X 18 mm Cover Slips Fisher Scientific 12-541A
Petri Dish with Clear Lid (60 x 15 mm) Fisher Scientific FB0875713A
Petri Dishes with Clear Lid (100X15mm) Fisher Scientific FB0875712
Plain Glass Microscope Slides (75 x 25 mm) Fisher Scientific 12-544-4
12- Well Tissue Culture Plates Fisher Scientific 50-197-4804
Software 
Prism Graphpad
Bacterial Strains
E. coli OP50
Worm Strains
Strain Genotype Transgene Source
MT2124   let-60(n1046) IV. CGC
MT7567 lin-1(sy254) IV. CGC
PS1839 let-23(sa62) II. CGC

Riferimenti

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Citazione di questo articolo
van der Hoeven, D., Truong, T. N. L., Naji, A., Thapa, S., Hancock, J. F., van der Hoeven, R. Identification of EGFR and RAS Inhibitors using Caenorhabditis elegans. J. Vis. Exp. (164), e61788, doi:10.3791/61788 (2020).

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