Immunfärbung von Dissected Zebrafisch embryonale Herz
Summary
Eine schnelle Weg zur Immunfärbung von Zebrafisch-Embryonen Herzen Verhalten beschrieben wird. Im Vergleich zu der ganze Berg Immunfärbung Ansatz, diese Methode drastisch erhöht die Penetration der Antikörper, die die Erzielung einer hohen Auflösung, dass zelluläre / subzelluläre Strukturen offenbaren sich im Herzen innerhalb von einer deutlich reduzierten Bearbeitungszeit ermöglicht.
Abstract
Zebrafisch-Embryo wird zu einem beliebten In-vivo-Modell zum Studium der Wirbeltiere kardiale Entwicklung und menschlichen Herzerkrankungen aufgrund seiner vorteilhaften Embryologie und Genetik 1,2. Etwa 100-200 Embryonen sind leicht zugänglich jede Woche von einem einzigen Paar von erwachsenen Fischen. Die transparente Embryonen, die ex utero entwickeln eignen sie sich ideal für die Beurteilung der Herzfehler 3. Der Ausdruck eines beliebigen Gens kann über Morpholino Technologie-oder RNA-Injektion 4 manipuliert werden. Darüber hinaus freuen genetische Screens haben bereits eine Liste von Mutanten, die unterschiedlichen Perspektiven der Kardiogenese 5 berühren generiert.
Whole mount Immunfärbung ist eine wichtige Technik in diesem Tiermodell die Expressionsmuster des Zielproteins zu einem bestimmten Gewebe 6 offenbaren. Allerdings haben Bilder mit hoher Auflösung, dass zelluläre oder subzelluläre Strukturen offenbaren kann schwierig gewesen, vor allem aufgrund der physikalischen location des Herzens und der schlechten Penetration der Antikörper.
Hier stellen wir eine Methode, um diese Engpässe durch Sezieren Herz zuerst und dann die Durchführung der Färbung auf der Oberfläche eines Objektträgers Adresse. Um den Verlust von kleinen Herzen Proben zu verhindern und die Lösung Handhabung zu erleichtern, haben wir eingeschränkt Herzen Proben innerhalb eines Kreises auf der Oberfläche der Objektträger durch eine immEdge Stift gezeichnet. Nach der Färbung kann die Fluoreszenz-Signale direkt von einem zusammengesetzten Mikroskop beobachtet werden.
Unsere neue Methode verbessert das Eindringen von Antikörpern, da ein Herz aus einem embryonalen Fisch besteht nur aus wenigen Zellschichten. Qualitativ hochwertige Bilder von intakten Herzen kann innerhalb eines stark reduzierten Prozession Zeit für Zebrafischembryonen im Alter von Tag 2 bis Tag 6 gewonnen werden. Unsere Methode kann möglicherweise ausgeweitet werden auf andere Organe entweder von Zebrafisch oder andere kleine Tiere seziert Fleck.
Protocol
Discussion
Im Vergleich zu klassischen whole mount Immunfärbung Methoden, hat unsere Methode folgende Vorteile. Erstens kann viel stärkere Fluoreszenzsignale konsequent erreicht werden durch die verbesserte Penetration. In der ganze Berg Immunfärbung Methode, die dichten Haut umgebende Gewebe des Herzens deutlich reduziert das Eindringen von vielen Antikörper, was zu hohen Hintergrund in den ganzen Körper. Dieses Problem ist besonders gravierend für Embryonen älter als 3-Tages-post-Fertilisation (DPF). Im Gegensatz dazu sez…
Declarações
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
Wir danken Beninio Jomok für seine Hilfe beim Zebrafisch Tierhaltung. Diese Arbeit wird durch NIH HL81753 finanziert.
Materials
| Name of the reagent | Company | Catalogue number |
| tricaine | Research organics | 3007T |
| Formaldehyde | Polysciences | 04018 |
| Insulin syringe | Becton Dickinson | 329461 |
| Triton-X-100 | Sigma | T8532 |
| Anti-β-catenin antibody | Sigma | C7207 |
| Anti-Mef2c antibody | Santa Cruz Biotech | SC313 |
| F59 | Zfin | |
| Anti-α-actinin antibody | Sigma | A7811 |
| Anti-Ilk antibody | Cell signaling | #3862 |
| Alexa fluor 568 Goat anti rabbit IgG | Invitrogen | A11011 |
| Alexa fluor 488 Goat anti mouse IgG1 | Invitrogen | A21121 |
| Mounting medium for fluorescence | Vector | H-1200 |
| ImmEdge pen | Vector | H-4000 |
| Poly-L-lysin coated slides | Electron microscopy sciences | 63410-01 |
| Microscope cover glass | Fisher | 12-543-D |
| Concaved microscope slides | Fisher | 7-1305-8 |
| Dissection microscope | Leica MZ95 | |
| Compound microscope | Zeiss | Axioplan2 |
| ApoTome | Zeiss |
PBST:
1 x PBS
0.5% Triton-X 100
25X Tricaine:
400 mg Tricaine
97.9 mL ddH2O
2.1 mL (1M Tris pH9)
Adjust pH to 7.0
Referências
- Shin, J. T., Fishman, M. C. From Zebrafish to human: modular medical models. Annu. Rev. Genomics Hum. Genet. 3, 311-340 (2002).
- Beis, D., Stainier, D. Y. In vivo cell biology: following the zebrafish trend. Trends. Cell. Biol. 16, 105-112 (2006).
- Schoenebeck, J. J., Yelon, D. Illuminating cardiac development: Advances in imaging add new dimensions to the utility of zebrafish genetics. Semin. Cell. Dev. Biol. 18, 27-35 (2007).
- Nasevicius, A., Ekker, S. C. Effective targeted gene ‘knockdown’ in zebrafish. Nat. Genet. 26, 216-220 (2000).
- Dahme, T., Katus, H. A., Rottbauer, W. Fishing for the genetic basis of cardiovascular disease. Dis. Model Mech. 2, 18-22 (2009).
- Huang, W., Zhang, R., Xu, X. Myofibrillogenesis in the developing zebrafish heart: A functional study of tnnt2. Dev. Biol. 331, 237-249 (2009).
- Westerfield, M. . The Zebrafish Book. , (2007).
- Buckingham, M. E. Muscle: the regulation of myogenesis. Curr. Opin. Genet. Dev. 4, 745-751 (1994).
- Wheelock, M. J., Knudsen, K. A. Cadherins and associated proteins. Vivo. 5, 505-513 (1991).
- Sun, X. Cardiac hypertrophy involves both myocyte hypertrophy and hyperplasia in anemic zebrafish. PLoS One. 4, e6596-e6596 (2009).
- Auman, H. J. Functional modulation of cardiac form through regionally confined cell shape changes. PLoS Biol. 5, e53-e53 (2007).
- Chen, Z. Depletion of zebrafish essential and regulatory myosin light chains reduces cardiac function through distinct mechanisms. Cardiovasc. Res. 79, 97-108 (2008).
