Summary

Immunostaining הלב גזור עוברי דג הזברה

Published: January 10, 2012
doi:

Summary

דרך מהירה לבצע immunostaining לב עוברי דג הזברה הוא תיאר. לעומת הגישה הר שלם immunostaining, שיטה זו מגדילה באופן דרמטי את החדירה של נוגדנים, אשר מאפשר קבלת תמונות ברזולוציה גבוהה החושפים מבנים הסלולר / subcellular בלב תוך זמן עיבוד מופחת בהרבה.

Abstract

עובר דג הזברה הופך פופולרי מודל חוליות vivo לחקר התפתחות לב ומחלות לב אדם עקב אמבריולוגיה יתרון שלה בגנטיקה 1,2. אודות 100-200 עוברי זמינים בכל שבוע מזוג אחד של דגים בוגרים. עוברי שקוף המתפתחים ברחם לשעבר להפוך אותם אידיאליים להערכת פגמים לב 3. הביטוי של הגן כל ניתן להשפיע באמצעות morpholino טכנולוגיית הזרקה או RNA 4. יתר על כן, קדימה מסכי גנטית יצרו כבר רשימה של מוטציות שעלולות להשפיע על היבטים שונים של cardiogenesis 5.

הר שלם immunostaining היא טכניקה חשובה במודל זה חיה כדי לחשוף את דפוס הביטוי של החלבון ברקמות ממוקדות מסוים 6. עם זאת, תמונות ברזולוציה גבוהה שיכולים לחשוף מבנים הסלולר או subcellular היה קשה, בעיקר בשל locat הפיזייון של הלב חדירה לקויה של הנוגדנים.

כאן, אנו מציגים שיטה כתובת אלה צווארי בקבוק ידי ביתור הלב הראשון ולאחר מכן לנהל את התהליך מכתים על פני השטח של המיקרוסקופ שקופית. כדי למנוע אובדן של דגימות לב קטן כדי להקל על הטיפול פתרון, אנחנו מוגבלים דגימות לב בתוך עיגול על פני השטח של המיקרוסקופ מגלשות רתומות עט immEdge. לאחר מכתים, אותות הקרינה ניתן לצפות ישירות על ידי מיקרוסקופ המתחם.

השיטה החדשה שלנו משפר באופן משמעותי את החדירה של נוגדנים, שכן לב מהדגים עובריים רק מורכב משכבות תאים בודדים. תמונות באיכות גבוהה של לבבות שלמים ניתן להשיג תוך זמן התהלוכה הרבה מופחת עבור עוברי דג הזברה בן 2 מיום ליום 6. בשיטה שלנו ניתן להאריך פוטנציאל כתם איברים אחרים גזור מן דג הזברה או חיות קטנות אחרות.

Protocol

1. הכנת שקופיות קאמרית humidified החדר humidified ניתן מתיבת כגון תיבת קצה התרוקן. לעטוף גם את החדר ואת לכסות ברדיד אלומיניום כדי להגן על דגימות מן האור. בתוך החדר, לשים ערימה של מגבות נייר רטוב כדי לשמ?…

Discussion

לעומת שיטות קלאסיות immunostaining כל הר, בשיטה שלנו יש את היתרונות הבאים. ראשית, אותות ניאון חזק הרבה יותר ניתן להשיג באופן עקבי בשל חדירה משופרת. ב שיטת הר שלם immunostaining, רקמת העור צפוף המקיף את הלב משמעותית את החדירה של נוגדנים רבים, וכתוצאה מכך רקע גבוה בכל הגוף. בעיה זו חמור…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

אנו מודים Beninio Jomok על עזרתו בעלי דג הזברה. עבודה זו ממומנת על ידי NIH HL81753.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number
tricaine Research organics 3007T
Formaldehyde Polysciences 04018
Insulin syringe Becton Dickinson 329461
Triton-X-100 Sigma T8532
Anti-β-catenin antibody Sigma C7207
Anti-Mef2c antibody Santa Cruz Biotech SC313
F59 Zfin  
Anti-α-actinin antibody Sigma A7811
Anti-Ilk antibody Cell signaling #3862
Alexa fluor 568 Goat anti rabbit IgG Invitrogen A11011
Alexa fluor 488 Goat anti mouse IgG1 Invitrogen A21121
Mounting medium for fluorescence Vector H-1200
ImmEdge pen Vector H-4000
Poly-L-lysin coated slides Electron microscopy sciences 63410-01
Microscope cover glass Fisher 12-543-D
Concaved microscope slides Fisher 7-1305-8
Dissection microscope Leica MZ95  
Compound microscope Zeiss Axioplan2
ApoTome Zeiss  

PBST:
1 x PBS
0.5% Triton-X 100

25X Tricaine:
400 mg Tricaine
97.9 mL ddH2O
2.1 mL (1M Tris pH9)
Adjust pH to 7.0

Referências

  1. Shin, J. T., Fishman, M. C. From Zebrafish to human: modular medical models. Annu. Rev. Genomics Hum. Genet. 3, 311-340 (2002).
  2. Beis, D., Stainier, D. Y. In vivo cell biology: following the zebrafish trend. Trends. Cell. Biol. 16, 105-112 (2006).
  3. Schoenebeck, J. J., Yelon, D. Illuminating cardiac development: Advances in imaging add new dimensions to the utility of zebrafish genetics. Semin. Cell. Dev. Biol. 18, 27-35 (2007).
  4. Nasevicius, A., Ekker, S. C. Effective targeted gene ‘knockdown’ in zebrafish. Nat. Genet. 26, 216-220 (2000).
  5. Dahme, T., Katus, H. A., Rottbauer, W. Fishing for the genetic basis of cardiovascular disease. Dis. Model Mech. 2, 18-22 (2009).
  6. Huang, W., Zhang, R., Xu, X. Myofibrillogenesis in the developing zebrafish heart: A functional study of tnnt2. Dev. Biol. 331, 237-249 (2009).
  7. Westerfield, M. . The Zebrafish Book. , (2007).
  8. Buckingham, M. E. Muscle: the regulation of myogenesis. Curr. Opin. Genet. Dev. 4, 745-751 (1994).
  9. Wheelock, M. J., Knudsen, K. A. Cadherins and associated proteins. Vivo. 5, 505-513 (1991).
  10. Sun, X. Cardiac hypertrophy involves both myocyte hypertrophy and hyperplasia in anemic zebrafish. PLoS One. 4, e6596-e6596 (2009).
  11. Auman, H. J. Functional modulation of cardiac form through regionally confined cell shape changes. PLoS Biol. 5, e53-e53 (2007).
  12. Chen, Z. Depletion of zebrafish essential and regulatory myosin light chains reduces cardiac function through distinct mechanisms. Cardiovasc. Res. 79, 97-108 (2008).
check_url/pt/3510?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Yang, J., Xu, X. Immunostaining of Dissected Zebrafish Embryonic Heart. J. Vis. Exp. (59), e3510, doi:10.3791/3510 (2012).

View Video