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Biology

Bewertung von L-DOPA-induzierten Dyskinesien im einseitig 6-OHDA-läsionierten Rattenmodell der Parkinson-Krankheit

Published: October 4, 2021 doi: 10.3791/62924
* These authors contributed equally

Summary

Nagetiermodelle von L-DOPA-induzierten Dyskinesien sind unschätzbare Werkzeuge, um therapeutische Interventionen zu identifizieren, um die Entwicklung abzuschwächen oder die Manifestationen zu lindern, die aufgrund der wiederholten Verabreichung von L-DOPA auftreten. Dieses Protokoll zeigt, wie dyskinetische Bewegungen im einseitig 6-OHDA-läsionierten Rattenmodell der Parkinson-Krankheit induziert und analysiert werden können.

Abstract

L-DOPA-induzierte Dyskinesien (LIDs) beziehen sich auf motorische Komplikationen, die durch eine längere L-DOPA-Verabreichung an Patienten mit Parkinson-Krankheit (PD) entstehen. Das häufigste Muster, das in der Klinik beobachtet wird, ist die Spitzendosis-Dyskinesie, die aus klinischen Manifestationen von choreiformen, dystonischen und ballistischen Bewegungen besteht. Das 6-Hydroxydopamin (6-OHDA) Rattenmodell von PD ahmt mehrere Eigenschaften von LIDs nach. Nach wiederholter L-DOPA-Verabreichung zeigen 6-OHDA-läsionierte Ratten dyskinetische Bewegungen (z. B. abnormale unwillkürliche Bewegungen, AIMs). Dieses Protokoll zeigt, wie AIMs bei 6-OHDA-läsionierten Ratten mit 90%-95% dopaminerger Depletion im nigrostriatalen Signalweg induziert und analysiert werden können. Wiederholte Verabreichung (3 Wochen) von L-DOPA (5 mg/kg, kombiniert mit 12,5 mg/kg Benserazid) kann die Entwicklung von AIM induzieren. Die Zeitverlaufsanalyse zeigt einen signifikanten Anstieg der AIMs nach 30-90 min (Peak-Dose-Dyskinesie). Nagetiermodelle von LIDs sind ein wichtiges präklinisches Instrument, um wirksame antidyskinetische Interventionen zu identifizieren.

Introduction

Die Dopamin-Vorstufe L-3,4-Dihydroxyphenylalanin (L-DOPA) stellt die wirksamste Behandlung der motorischen Symptome der Parkinson-Krankheit (PD)1 dar. Die L-DOPA-Therapie kann motorische Symptome im Zusammenhang mit PD lindern, verliert jedoch mit der Zeit an Wirksamkeit. Motorische Schwankungen wie "Abnutzungsschwankung" oder "Verschlechterung am Ende der Dosis" manifestieren sich klinisch als verkürzte Wirkungsdauer einzelner L-DOPA-Dosen2. In anderen Fällen bestehen klinische Manifestationen aus langsamen Drehbewegungen und abnormalen Körperhaltungen (Dystonie)3 und treten auf, wenn der Dopaminspiegel niedrig ist (Off-Period-Dystonie)4. Auf der anderen Seite treten L-DOPA-induzierte Dyskinesien (LIDs) auf, wenn der Dopaminspiegel im Plasma und im Gehirn hoch ist5.

LIDs erzeugen schwächende Nebenwirkungen, darunter motorische Komplikationen wie choreiforme, dystonische und ballistische6-Bewegungen. Einmal etabliert, treten LIDs nach jeder L-DOPA-Verabreichung auf. Motorische Komplikationen treten bei 40% -50% der PD-Patienten auf, die sich 5 Jahre lang einer L-DOPA-Therapie unterziehen, und die Inzidenz steigt im Laufe der Jahre7. Obwohl die pathophysiologischen Mechanismen, die an der Entwicklung von LIDs bei Parkinson-Patienten beteiligt sind, noch nicht vollständig aufgeklärt sind, sind das Ausmaß der dopaminergen Denervierung, die pulsatile L-DOPA-Verabreichung, nachgeschaltete Veränderungen in striatalen Proteinen und Genen sowie Anomalien in Nicht-Dopamin-Transmittersystemen Faktoren, die zur Entwicklung dieser unerwünschten Nebenwirkungen beitragen 6,8,9,10.

Das Neurotoxin 6-Hydroxydopamin (6-OHDA) ist ein gut charakterisiertes Werkzeug zur Untersuchung von PD bei Nagetieren11,12,13,14. Da 6-OHDA die Blut-Hirn-Schranke nicht überschreitet, muss es direkt in den nigrostriatalen Weg injiziert werden. 6-OHDA-induzierte dopaminerge Depletion ist konzentrations- und standortabhängig15. Die einseitige Verabreichung von 6-OHDA am medialen Vorderhirnbündel (MFB) kann bei Nagetieren schwere (>90%) nigrostriatale Schäden verursachen16,17,18,19. Die chronische Verabreichung von L-DOPA an schwere einseitig 6-OHDA-läsionierte Nagetiere verursacht das Auftreten dyskinetischer Bewegungen, die als abnormale unwillkürliche Bewegungen (AIMs) bezeichnet werden. Dyskinetische Bewegungen bei Nagetieren haben ähnliche molekulare, funktionelle und pharmakologische Mechanismen im Zusammenhang mit LIDs bei Parkinson-Patienten5. Daher sind 6-OHDA-läsionierte Ratten20 und Mäuse21 wertvolle präklinische Modelle zur Untersuchung von LIDs. Bei chronischer Behandlung (7-21 Tage) mit therapeutischen Dosen von L-DOPA (5-20 mg/kg) zeigen einseitig 6-OHDA-läsionierte Ratten und Mäuse eine allmähliche Entwicklung von AIMs, die die Vordergliedmaßen, den Rumpf und die orofazialen Muskeln kontralateral zur Läsion betreffen 17,18,19,20,22,23,24 . Diese Bewegungen zeigen sich in einem Zeitverlauf, der L-DOPA-induzierten Spitzendosis-Dyskinesien bei PD-Patienten25 ähnelt und sind durch hyperkinetische Bewegungen und Dystoniegekennzeichnet 5. AIMs werden normalerweise basierend auf ihrem Schweregrad (z. B. wenn ein bestimmtes AIM vorhanden ist) und ihrer Amplitude (z. B. gekennzeichnet durch die Amplitude jeder Bewegung) bewertet5,23,25.

6-OHDA-läsionierte Nagetiermodelle von LIDs zeigen Gesichtsvalidität (d.h. das Modell hat mehrere Merkmale, die dem menschlichen Zustand ähneln)5,11,26,27,28. Nagetier-AIMs, ähnlich wie bei Parkinson-Patienten, werden als hyperkinetische (Vordergliedmaßen und orolinguale) und dystone (axiale) Bewegungen angesehen29 und ahmen Dyskinesie mit höchster Dosis nach. Auf molekularer und funktioneller Ebene teilen Nagetiermodelle viele pathologische Merkmale mit PD-Patienten5, wie z.B. die Hochregulierung von FosB/ΔFosB 19,26,30,31,32,33 und Serotonintransporter (SERT)34,35 . In Bezug auf die prädiktive Validität zeigen Medikamente, die LIDs bei Parkinson-Patienten reduzieren (z. B. der N-Methyl-D-Aspartat (NMDA)-Rezeptorantagonist Amantadin), eine antidyskinetische Wirksamkeit im Nagetiermodell 22,36,37,38,39.

Die Bewertungsskala für Nagetier-AIM wurde basierend auf vier AIMs-Subtypen erstellt, darunter AIMs, die Kopf, Hals und Rumpf betreffen (axiale AIMs), hyperkinetische Vorderbeinbewegungen (Gliedmaßen-AIMs) und dyskinetisch-ähnliche orolinguale Bewegungen (orolinguale AIMs). Obwohl die kontralaterale Rotation (Lokomotiv-AIMs) auch bei einseitig läsionierten Nagetieren 20,22,23,25,40 vorhanden ist, wurde sie nicht als dyskinetische Bewegung bewertet, da sie möglicherweise kein spezifisches Maß für LIDs 22,37,41 darstellt.

Hier werden wir beschreiben, wie dyskinetische Bewegungen (axiale, gliedmaßenartige und orolinguale AIMs) im schweren (>90%) einseitig 6-OHDA-läsionierten Rattenmodell von PD induziert und analysiert werden können. Wir haben unser Protokoll auf der Grundlage der bisherigen Literatur und unseres Laborfachwissens organisiert.

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Protocol

Alle Experimente wurden in Übereinstimmung mit der Ethikkommission der Fakultät für Philosophie, Naturwissenschaften und Literatur von Ribeirão Preto (CEUA/FFCLRP 18.5.35.59.5) durchgeführt.

1. 6-OHDA-Läsion

  1. Verwenden Sie zu Beginn der Experimente (6 Wochen) männliche Ratten von Sprague-Dawley mit einem Gewicht von 200-250 g. Unterbringung der Tiere (2-3 pro Käfig) unter Standardlaborbedingungen (12:12 h Hell-Dunkel-Zyklus, Licht an um 06:00 Uhr, temperaturgeführte Einrichtungen (22-24 °C), mit Futter und Wasser ad libitum.
    ANMERKUNG: Eine vollständige Beschreibung der Erzeugung schwerer 6-OHDA-läsionierter Ratten ist an anderer Stellebeschrieben 42.
  2. Akklimatisieren Sie die Tiere vor Beginn eines Versuchsverfahrens in geeigneter Weise.
  3. Verabreichen (intraperitoneal, i.p.) den Noradrenalin-Transporterhemmer Imipramin (20 mg/kg, gelöst in 0,9%iger Kochsalzlösung) 30 min vor der Operation.
    HINWEIS: Die Verabreichung von Imipramin erhöht die 6-OHDA-Selektivität für dopaminerge Neuronen.
  4. Ketamin / Xylazin (70/10 mg / kg) intraperitoneal verabreichen.
  5. Stellen Sie sicher, dass das Tier durch die mangelnde Reaktion auf die Zehenklemmung tief betäubt und in Bauchlage im stereotaktischen Apparat auf der Oberseite eines Heizkissens positioniert ist.
  6. Entfernen Sie das Fell auf dem Kopf und desinfizieren Sie den Operationsbereich 3 mal, abwechselnd zwischen einem jodbasierten Peeling und Alkohol.
  7. Verwenden Sie ein Skalpell, um einen Schnitt (ca. 1 cm) in der Region zu machen, in der die Mikroinjektion stattfinden wird.
  8. Reinigen Sie die Schädelregion mit Wattestäbchen und stellen Sie sicher, dass Bregma und Lambda freiliegen.
  9. Stellen Sie sicher, dass die stereotaktischen MFB-Koordinaten von Bregma43,44,45 stammen: -4,3 mm vorder, 1,6 mm lateral (rechte Seite) und 8,3 mm ventral (von der Dura mater).
  10. Das 6-OHDA wird mit einer Rate von 0,4 μL/min (10 μg in 4 μl Kochsalzlösung mit 0,1% Ascorbinsäure) einseitig in das rechte mediale Vorderhirnbündel (MFB) mit einer 50-μL-Hamilton-Glasspritze verabreicht.
  11. Am Ende der Operation vernähen Sie den Kopfhautschnitt und rehydrieren Sie das Tier mit warmer (~37 °C) steriler 0,9% Kochsalzlösung (~10 ml/kg, s.c.).
  12. Nehmen Sie das Tier aus dem stereotaktischen Rahmen und legen Sie es in einen erwärmten Erholungskäfig. Überwachen Sie, bis das Bewusstsein wiedererlangt ist.
  13. Beurteilen Sie die Wirksamkeit der dopaminergen Läsion 4 Wochen nach der Läsion mit einem Stepping-Test46,47.
    HINWEIS: In diesem Test wird die Akinesie der Vordergliedmaße kontralateral zur Läsion durch die Anzahl der Anpassungsschritte mit der Vorderpfote kontralateral zur Läsion beurteilt. Ratten, die drei oder weniger Anpassungsschritte mit der kontralateralen Vorderbein aufweisen, werden in die Studie als mutmaßlich schwere 6-OHDA-läsionierte Ratten eingeschlossen48.

2. L-DOPA chronische Behandlung

  1. Beginnen Sie die chronische Behandlung am Montag, 4 Wochen nach der 6-OHDA-Läsion.
    HINWEIS: Da AIMs an 3 aufeinanderfolgenden Tagen pro Woche (Mittwoch, Donnerstag und Freitag) für 3 Wochen auf Video aufgezeichnet werden, wird empfohlen, die Behandlung am Montag zu beginnen.
  2. Behandeln Sie die Ratten mit frisch zubereitetem L-DOPA (über subkutan (s.c.), 1 ml/kg) plus Benzerazidhydrochlorid (5 mg/kg bzw. 12,5 mg/kg) für 3 Wochen, einmal täglich von Montag bis Freitag45.
    HINWEIS: Sobald AIMs eingerichtet sind, manifestieren sie sich bei jeder Verabreichung von L-DOPA. Daher ist die L-DOPA-Verabreichung 2-4 mal pro Woche nach der 3-wöchigen Induktionsphase ausreichend, um eine stabile Expression von AIM48 aufrechtzuerhalten.

3. AIMs Aufzeichnung und Bewertung

  1. Führen Sie Experimente zwischen 09:00 Uhr und 17:00 Uhr durch. Stellen Sie sicher, dass der Prüfer die Identität und die pharmakologische Behandlung der Ratten überhaupt nicht kennt.
  2. Legen Sie die Ratte vorsichtig in einen transparenten Zylinder (20 cm Durchmesser x 40 cm hoch) und lassen Sie sie mindestens 15 Minuten akklimatisieren. Stellen Sie sicher, dass der Boden mit dem Bettzeug bedeckt ist. Spiegel müssen hinter dem Zylinder positioniert werden, damit der Experimentator das Tier aus allen möglichen Winkeln beobachten kann.
    HINWEIS: Wenn es mehr als eine Ratte pro Versuch gibt, verwenden Sie einen Zylinder für jede Ratte. Die Manipulation der Tiere zwischen den Sitzungen kann die Verhaltensanalyse beeinträchtigen.
  3. Positionieren Sie eine hochauflösende Videokamera so, dass die Anzeige von axialen, gliedmaßenartigen und orolingualen AIMs begünstigt wird. Da unter diesen experimentellen Bedingungen ein Rotationsverhalten vorhanden ist, ermöglichen die Spiegel hinter dem Zylinder die Verfolgung von AIM in einem 360°-Winkel. Verwenden Sie ein Stativ oder befestigen Sie die Kamera direkt an der Bank.
    HINWEIS: Orolinguale AIMs können schwierig zu bewerten sein, insbesondere wenn es eine hohe Inzidenz von Rotationsverhalten gibt. Die Aufnahme von Videos mit der Kamera, die etwas unterhalb des Flugzeugs positioniert ist, in dem sich die Tiere in einem Winkel von 15 ° befinden, hilft, diesen Bewegungssubtyp zu beobachten.
  4. Nehmen Sie das Tier vorsichtig aus dem Zylinder und verabreichen Sie L-DOPA (5 mg/kg kombiniert mit 12,5 mg/kg Benserazid, s.c.).
  5. Setzen Sie das Tier wieder in den Zylinder und starten Sie einen Timer, um AIMs nach der L-DOPA-Injektion zu verfolgen. Verwenden Sie eine Videokamera, um AIMs für 180 Minuten nach der Injektion von L-DOPA aufzuzeichnen. Obwohl die Analyse durch direkte Beobachtung des Tieres durchgeführt werden kann, wird das Offline-Scoring bevorzugt.
    HINWEIS: Stellen Sie sicher, dass der Timer auch auf Video aufgezeichnet wird, damit AIMs zu genauen Zeiten nach der L-DOPA-Verabreichung bewertet werden können.
  6. Score AIMs in 30-Minuten-Intervallen bis zu 180 Minuten nach L-DOPA-Injektion (Definitionen siehe Tabelle 1), wie ursprünglich beschrieben20,23. Die Ergebnisse müssen über 1-2 Minuten Epochen angegeben und als axial, gliedmaßen- oder orolingual klassifiziert werden (Abbildung 1).
  7. Beobachten Sie sorgfältig alle AIM- und Attributwerte für Schweregrad und Amplitude. Anweisungen finden Sie in Tabelle 1 . Nehmen Sie keine normalen Verhaltensweisen wie Aufzucht, Schnüffeln, Pflege und Nagen in die Bewertung auf. Es wird insgesamt sechs Beobachtungsperioden geben (30, 60, 90, 120, 150 und 180 Minuten).
SUBTYPEN
Axial: Torsion von Kopf, Hals und Rumpf
Extremität: unwillkürliche Bewegungen sowohl des distalen als auch des proximalen Vorderbeins
Orolingual: unwillkürliche Bewegungen der orofazialen Muskulatur
STRENGE
0: Nicht vorhanden
1: Gelegentlich (mit Unterbrechungen, in weniger als der Hälfte der Beobachtungszeit)
2: Häufig (mit Unterbrechungen, aber in mehr als der Hälfte der Beobachtungszeit vorhanden)
3: Kontinuierlich, aber unterbrochen durch äußere Sinnesreize
4: Kontinuierlich und nicht unterbrochen durch äußere Sinnesreize
AMPLITUDE
Axial
1: Torsion von Kopf und Hals in ca. 30° Winkel
2: Torsion von Kopf und Hals bei ca. 30° < Winkel ≤ 60°
3: Torsion von Kopf, Hals und oberem Rumpf bei ca. 60° < Winkel ≤ 90°
4: Torsion von Kopf, Hals und Rumpf in > 90°-Winkel, wodurch die Ratte oft das Gleichgewicht verliert
Glied
1: Kleine unwillkürliche Bewegungen des distalen Vorderbeins
2: Bewegungen mit niedriger Amplitude, die eine Translokation sowohl der distalen als auch der proximalen Vorderbeine verursachen
3: Unwillkürliche Bewegungen der gesamten Extremität, einschließlich der Schultermuskulatur
4: Starke Gliedmaßen- und Schulterbewegungen, oft ähnlich wie Ballismus
Orolingual
1: Kleine unwillkürliche Bewegungen der orofazialen Muskulatur
2: Orofaziale Bewegungen hoher Amplitude mit Zungenvorsprung

Tabelle 1: AIMS-Definition und Bewertungskriterien.

Figure 1
Abbildung 1: Sequenz von Fotos, die jeden AIM-Subtyp zeigen. (A bis A'") Axiales AIM mit dystonischen Bewegungen in verschiedenen Winkeln (A: 30° Winkel, A': 30° < Winkel ≤ 60°, A": 60° < Winkel ≤ 90° und A'": > 90° Winkel). (B bis B") Gliedmaße AIM (schwarze Pfeile), die unwillkürliche Bewegungen des distalen (B und B') und des gesamten Vorderbeins (einschließlich Schulter, B") zeigen. (C) Oringuales AIM (roter Pfeil) mit hoher Amplitude mit Zungenvorsprung. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung zu sehen.

4. Datenanalyse

  1. Berechnen Sie axiale, gliedrige oder orolinguale AIMs-Subtypen durch Multiplikation des Schweregrads und der Amplitudenwerte für jeden Beobachtungszeitraum nach der L-DOPA-Verabreichung (d. h. sechs Beobachtungsperioden), wie zuvor beschrieben20. Die theoretische Höchstpunktzahl, die ein Tier in einer Testsitzung erreichen könnte, beträgt 240 (die maximale Punktzahl pro Beobachtungszeitraum beträgt 40, siehe Tabelle 1 für Details).
  2. Zeichnen Sie AIMs-Werte für alle sechs Beobachtungszeiträume, die am Mittwoch, Donnerstag und Freitag über die 3 Wochen der chronischen L-DOPA-Verabreichung aufgezeichnet wurden (Abbildung 2). AIMs können summiert werden, um die maximale Punktzahl jedes Tieres an jedem Scoring-Tag (Abbildung 3) oder jede Woche (Abbildung 4) über die 3 Wochen der chronischen L-DOPA-Verabreichung anzugeben.
  3. Überprüfen Sie, ob die Daten eine nahezu normale Verteilung aufweisen, bevor Sie den statistischen Analyseansatz auswählen.
    HINWEIS: AIMs Bewertungsskalen bestehen aus ordinalen Daten und können mit nichtparametrischen Statistiken analysiert werden. Parametrische Tests werden häufig verwendet, wenn AIM-Ergebnisse zwischen experimentellen Gruppen nach wiederholten Testsitzungen verglichenwerden 40.

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Representative Results

Obwohl die bei Ratten beobachteten AIM-Muster im Vergleich zu denen bei Menschen und nichtmenschlichen Primaten einfacher und begrenzter sind, reproduziert dieses Modell sowohl hyperkinetische als auch dystonische Bewegungen, die durch chronische L-DOPA-Verabreichung induziert werden. Hier präsentieren wir Daten aus einer Gruppe (n = 10) von einseitig 6-OHDA-läsionierten Ratten, die 3 Wochen lang (Montag bis Freitag) chronisch mit L-DOPA (5 mg/kg kombiniert mit 12,5 mg/kg Benserazid) behandelt wurden. Beachten Sie, dass die Daten in Abbildung 2, Abbildung 3 und Abbildung 4 von denselben Tieren stammen.

Abbildung 2 zeigt die Zeitverlaufsanalyse für Scores, die auf axiale, gliedmaßen- und orolinguale AIM über 3 Wochen chronischer L-DOPA-Verabreichung angewendet wurden. Jeder AIM-Score-Subtyp zu einem bestimmten Beobachtungszeitraum wird als Multiplikation der Schweregrad- und Amplitudenwerte in dieser Analyse angegeben. Diese Art der Analyse kann nützlich sein, um die Wirkung von Medikamenten zu untersuchen, die das zeitliche Profil von AIM stören.Beachten Sie, dass L-DOPA-induzierte Dyskinesien mit Spitzendosis zwischen 30 und 90 Minuten mit einer allmählichen Abnahme nach 120 Minuten nach der Injektion auftreten (Abbildung 2).

Figure 2
Abbildung 2: Zeitverlaufsanalyse mit axialen, gliedmaßenbezogenen und orolingualen AIMs über 3 Wochen chronischer L-DOPA-Verabreichung (5 mg/kg kombiniert mit 12,5 mg/kg Benserazid) an 6-OHDA-läsionierte Ratten. (A) axiale, (B) gliedmaßen- und (C) orolinguale AIM wurden am Mittwoch, Donnerstag und Freitag über 3 Wochen chronischer L-DOPA-Verabreichung bewertet. Jeder AIM-Subtyp wird als Multiplikation von Schweregrad mal Amplitude in jedem der sechs Beobachtungszeiträume angegeben. Jeder AIM-Subtyp kann einzeln analysiert oder wie in (D) angegeben zusammengefasst werden. Beachten Sie, dass der Spitzenschweregrad der AIMs in der ersten Woche der chronischen L-DOPA-Verabreichung allmählich zunimmt. Die Daten werden als Mittelwert ± SEM (n = 10) ausgedrückt. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung zu sehen.

Abbildung 3 zeigt die Summe der AIM-Werte für alle sechs in Abbildung 2 dargestellten Beobachtungszeiträume (Datensätze sind für einfache Vergleiche farbcodiert). Diese Analyse zeigt die maximale Punktzahl jedes Tieres an jedem Bewertungstag (Mittwoch, Donnerstag und Freitag) über die 3 Wochen der chronischen L-DOPA-Verabreichung. Diese Art der Analyse kann vorteilhaft sein, um die Wirkung von Verbindungen mit potenziellen antidyskinetischen Profilen zu untersuchen, insbesondere weil die AIMs-Werte über die Wochen 2 und 3 der chronischen L-DOPA-Verabreichung stabil sind. Darüber hinaus können wöchentliche AIMs-Scores (Abbildung 4) aus der Summe der Scores generiert werden, die 6-OHDA-läsionierten Ratten am Mittwoch, Donnerstag und Freitag zugeordnet wurden.

Figure 3
Abbildung 3: Summe der axialen, gliedrigen und orolingualen AIMs an einzelnen Scoring-Tagen über 3 Wochen chronischer L-DOPA-Verabreichung (5 mg/kg kombiniert mit 12,5 mg/kg Benserazid) an 6-OHDA-läsionierte Ratten. In dieser Abbildung wurden die AIM-Werte in jedem der sechs Beobachtungszeiträume (siehe Details in Abbildung 2 Legende) summiert. Einzelne Datensätze wurden farbcodiert, um sie mit den in Abbildung 2 dargestellten Daten zu vergleichen. Diese Analyse zeigt die maximale Punktzahl jedes Tieres an jedem Bewertungstag (Mittwoch - W, Donnerstag - T und Freitag - F) nach 3 Wochen chronischer L-DOPA-Verabreichung. (a) axiale, (b) gliedmaßenartige und (c) orolinguale AIMs. (D) Summe der axialen, gliedmaßenbezogenen und orolingualen AIMs. Einweg-wiederholte Messungen ANOVA und Holm-Sidak Post-hoc-Test zeigten, dass AIMs allmählich über die chronische Verabreichung von L-DOPA zunehmen. Beachten Sie, dass die AIMs-Werte in den Wochen 2 und 3 der chronischen L-DOPA-Verabreichung stabil sind (*p < 0,05, **p < 0,01, ***p < 0,001 vs. Mittwoch (W) in Woche 1). Die Daten werden als Mittelwert ± SEM (n = 10) ausgedrückt. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung zu sehen.

Figure 4
Abbildung 4: Summe der wöchentlichen axialen, gliedrigen und orolingualen AIMs während der chronischen L-DOPA-Verabreichung (5 mg/kg kombiniert mit 12,5 mg/kg Benserazid) an 6-OHDA-läsionierte Ratten. In dieser Abbildung wurden die wöchentlich erzielten AIM (Mittwoch, Donnerstag und Freitag - siehe Abbildung 3) summiert. Diese Analyse zeigt die maximale Punktzahl jedes Tieres in jeder Woche der chronischen L-DOPA-Verabreichung. (a) axiale, (b) gliedmaßenartige und (c) orolinguale AIMs. (D) Summe der axialen, gliedmaßenbezogenen und orolingualen AIMs. Einseitige, wiederholte Messungen ANOVA und Holm-Sidak Post-hoc-Test zeigten, dass AIMs gegenüber der chronischen Verabreichung von L-DOPA zunehmen (*p < 0,05 vs. Woche 1). Die Daten werden als Mittelwert ± SEM (n = 10) ausgedrückt. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung zu sehen.

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Discussion

Dieses Protokoll zeigt, wie AIMs im Rattenmodell von PD induziert und analysiert werden können, die durch einseitige Mikroinjektion von 6-OHDA in das MFB induziert werden. Die chronische tägliche Verabreichung niedriger Dosen von L-DOPA (5 mg/kg, kombiniert mit 12,5 mg/kg Benserazid) führte zur Entwicklung von AIM über die 3 Behandlungswochen. Die zeitliche Analyse ergab einen signifikanten Anstieg der AIMs, und die Dyskinesie mit der höchsten Dosis wird zwischen 30 und 90 Minuten nach der Verabreichung von L-DOPA beobachtet. AIMs sind sich wiederholende und zwecklose Bewegungen, die axiale, gliedmaßenartige und orolinguale Muskeln betreffen. Das Protokoll und die hier dargestellten Daten stimmen mit der bisherigen Literatur überein 22,23,49,50,51.

Die axiale, gliedmaßen- und orolinguale AIMs-Bewertungsskala ist sehr empfindlich, da sie die Zeit (d. H. Schweregrad) bewertet, in der die Nagetiere dyskinetische Bewegungen zeigen, und die Amplitude dieser Bewegungenangibt 20. AIMs Scores können in verschiedenen zeitlichen Auflösungen ausgedrückt werden (siehe Abbildung 2, Abbildung 3, Abbildung 4)17,18,19,52. Mehrere Studien haben sich mit der Rolle der L-DOPA-Dosierung bei der Entwicklung von AIM befasst. Die chronische Verabreichung niedrigerer Dosen von L-DOPA (5-20 mg / kg) begünstigt eine allmähliche Entwicklung von AIM gegenüber der Behandlung, während hohe Dosen von L-DOPA (25 mg / kg oder mehr) zu einer schnellen und robusten Entwicklung von AIM führen 23,25,27,53. Interessanterweise kann ein Teil der schweren 6-OHDA-läsionierten Tiere nach chronischer Verabreichung niedriger Dosen von L-DOPA40,49,53 keine AIM entwickeln (oder sehr niedrige AIMs-Werte aufweisen). Es ist auch wichtig, den Verabreichungsweg des L-DOPA zu berücksichtigen. Obwohl AIM einen ähnlichen Beginn, ein ähnliches Zeitprofil und einen ähnlichen Schweregrad40 aufweisen, wurde gezeigt, dass Dosisversagensepisoden häufig bei intraperitoneal behandelten Rattenauftraten 27. Außerdem führte die i.p. Verabreichung von L-DOPA zu interindividuellen Schwankungen der Plasmaspiegel, ein Effekt, der nach s.c. Injektionen nicht beobachtet wurde27.

In dieser Studie wurden AIMs bei Tieren mit schweren nigrostriatalen Schäden (über 90% der dopaminergen Erschöpfung) nachgewiesen. Der massive Verlust der striatalen dopaminergen Innervation ist durch eine Verringerung der Anzahl der Anpassungsschritte gekennzeichnet, die mit der Vorderbein kontralateral zur Läsion durchgeführt werden48. Daher empfehlen wir den Stepping-Test zur Auswahl von Tieren mit mutmaßlich schweren 6-OHDA-Läsionen am nigrostriatalen Signalweg. Der Amphetamin-induzierte Rotationstest wird üblicherweise verwendet, um mutmaßliche Ratten mit 6-OHDA-Läsion auszuwählen. Amphetamin erhöht die Dopaminfreisetzung im intakten Striatum und erhöht somit das bestehende Ungleichgewicht zwischen dem innervierten und denervierten Striatum. Eine interessante Studie, die an 312 6-OHDA-läsionierten Rattendurchgeführt wurde 11 , zeigte jedoch keine Korrelation zwischen Amphetamin-induzierter Rotation und Tyrosinhydroxylase-positiven Zellen in der ipsilateralen Substantia nigra pars compacta. Dieselbe Studie zeigte eine schlechte Korrelation zwischen Amphetamin-induzierter Rotation und dem Schweregrad von AIMs.

Es besteht ein klarer Zusammenhang zwischen der Phänomenologie von AIM und dem Muster der nigrostriatalen dopaminergen Depletion20. Das 6-OHDA-Rattenmodell von PD, das wir in diesem Protokoll verwendeten, entwickelt nach 6-OHDA-Infusion im MFB eine schwere einseitige Depletion der nigrostriatalen Dopaminterminals. Ratten mit vollständig Dopamin-abgereichertem 6-OHDA-Läsion haben eine höhere Inzidenz von AIM als teilweise Dopamin-abgereicherte Tiere. Eine detaillierte Analyse der striatalen Expression der Neuropeptide Dynorphin und Enkephalin nach 6-OHDA-Läsion und chronischer L-DOPA-Verabreichung ist an anderer Stelle beschrieben45 und stimmt mit der bisherigen Literaturüberein 23,25. Auf molekularer Ebene teilen dyskinetische Nagetiere molekulare Marker, die mit der Dyskinesie assoziiert sind, die in nichtmenschlichen Primatenmodellen von PD- und PD-Patienten offensichtlich ist, wie z.B. die striatale Hochregulation des ΔFosB-Transkriptionsfaktors 26,32,33,54. Auch das Nagetiermodell von PD zeigt eine erhöhte Mikrogefäßdichte im Striatum als Reaktion auf die L-DOPA-Behandlung55 in ähnlicher Weise, die im Putamen von PD-Patienten56 beobachtet wurde. Nagetiermodelle von LIDs reagieren auf antidyskinetische pharmakologische Ansätze, die in der Klinik verwendet werden, wie den NMDA-Rezeptorantagonisten Amantadin22,23,24,25,26,27,28,29,30,31,32,33,34, 35,36,37, 38,39. Insgesamt bestätigen diese Beweise die Gesichtsvalidität und prädiktive Validität des 6-OHDA-Rattenmodells zur Charakterisierung der Pathophysiologie von LIDs und zum Screening von Verbindungen mit antidyskinetischen Eigenschaften. Das Mäusemodell von LIDs ist auch ein wertvolles Werkzeug, um verschiedene Aspekte von LIDs in transgenen Mäusen zu untersuchen. Protokolle für das Mäusemodell von LIDs finden sich in Artikeln aus verschiedenen Forschungsgruppen 30,57,58.

Es ist wichtig zu beachten, dass das 6-OHDA-läsionierte Nagetiermodell von LIDs Einschränkungen hat. 6-OHDA-induzierte dopaminerge Depletion ist akut im Vergleich zur progressiven Natur der nigrostriatalen Depletion beim PD-Patienten5. Es kann auch schwierig sein, ein ausgezeichnetes therapeutisches Fenster für die Verwendung eines Antidyskinetikums bei Patienten zu finden, da eine Erhöhung der Dosierung eines Arzneimittels die positive Wirkung von L-DOPA beeinträchtigen oder Nebenwirkungen hervorrufen kann, die im Tiermodell möglicherweise nicht beobachtet wurden59,60. Eine weitere Einschränkung des Rattenmodells von LIDs ist der Mangel an physischer Ähnlichkeit zwischen AIM bei Nagetieren und der Manifestation der choreiformen Bewegungen, die bei Patienten und nichtmenschlichen Primaten beobachtet wurden 10,61,62. Eine weitere mögliche Einschränkung des hier vorgestellten Protokolls besteht darin, dass AIMs alle 30 Minuten nach der L-DOPA-Verabreichung bewertet werden, aber dieses Problem kann gelöst werden, wenn der Experimentator alle Tiere für 180 Minuten nach der L-DOPA-Verabreichung auf Video aufnimmt. Der Experimentator kann dann das Scoring-Protokoll für häufigere Scorings anpassen (z. B. alle 10 oder 20 Minuten). Dieser Ansatz ist vorteilhaft in Experimenten, die ein dynamischeres Bild des zeitlichen Verlaufs von AIM erfordern (z. B. die Kombination von AIMs-Scoring und in vivo elektrophysiologischen oder neurochemischen Aufzeichnungen).

Zusammenfassend lässt sich sagen, dass das 6-OHDA-Rattenmodell von LID die Pathophysiologie von Krankheiten reproduziert und AIMs entwickelt, die durch klinisch eingesetzte Medikamente moduliert werden können. Obwohl es Einschränkungen hat, stellt das 6-OHDA-Rattenmodell von LID immer noch ein unschätzbares präklinisches Werkzeug dar, um wirksame antidyskinetische Interventionen mit translationalem Potenzial zu identifizieren.

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Disclosures

Die Autoren haben keine Interessenkonflikte.

Acknowledgments

Diese Arbeit wurde von der São Paulo Research Foundation (FAPESP, Stipendium 2017/00003-0) unterstützt. Wir sind dankbar für die Koordination zur Verbesserung des Hochschulpersonals (CAPES). Wir danken Dr. Anthony R. West, Dr. Heinz Steiner und Dr. Kuei Y. Tseng für die Unterstützung und das Mentoring.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
6-hydroxydopamine hydrobromide Sigma-Aldrich, USA H6507 Neurotoxin that produces degeneration of catecholaminergic terminals
Benzerazide hydrochloride Sigma B7283 Peripheral dopa-decarboxylase inhibitor
Camera Bullet IR Turbo HD (HD-TVI)  2.8mm B HIKVISION DS-2CE16C0T-IRP Camera used to record all behavior
Imipramine hidrochloride Alfa Aesar J63723 Norepinephrine transporter inhibitor (NET) used to protect noradrenergic neurons from 6-OHDA
Ketamine hydrochloride Ceva Animal Health Anesthesia for surgical intervention
L-3,4-dihydroxyphenylalanine (L-DOPA) methyl ester (hydrochloride) Cayman Chemical Company 16149 Dopamine precursor
Mirrors Used to observe the behavior of animals during experiments in all directions
Needles 0.30 x 13 mm PrecisionGlide Needles used to inject drugs
Sodium chloride (NaCl) Samtec Salt
Syringes 1 ml Sterile BD Plastipak Syringes used to inject drugs
Transparent cylinders Used to record animal behavior during experiments
Xylazine hydrochloride Ceva Animal Health Sedative, analgesic and muscle relaxant for surgical intervention

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References

  1. Jenner, P. Molecular mechanisms of L-DOPA-induced dyskinesia. Nature Reviews. Neuroscience. 9 (9), 665-677 (2008).
  2. Nutt, J. G. Levodopa-induced dyskinesia: review, observations, and speculations. Neurology. 40 (2), 340-345 (1990).
  3. Luquin, M. R., Scipioni, O., Vaamonde, J., Gershanik, O., Obeso, J. A. Levodopa-induced dyskinesias in Parkinson's disease: clinical and pharmacological classification. Movement Disorders: Official Journal of the Movement Disorder Society. 7 (2), 117-124 (1992).
  4. Fabbrini, G., Brotchie, J. M., Grandas, F., Nomoto, M., Goetz, C. G. Levodopa-induced dyskinesias. Movement Disorders: Official Journal of the Movement Disorder Society. 22 (10), 1379 (2007).
  5. Cenci, M. A., Crossman, A. R. Animal models of l-dopa-induced dyskinesia in Parkinson's disease. Movement Disorders: Official Journal of the Movement Disorder Society. 33 (6), 889-899 (2018).
  6. Bastide, M. F., et al. Pathophysiology of L-dopa-induced motor and non-motor complications in Parkinson's disease. Progress in Neurobiology. 132, 96-168 (2015).
  7. Manson, A., Stirpe, P., Schrag, A. Levodopa-induced-dyskinesias clinical features, incidence, risk factors, management and impact on quality of life. Journal of Parkinson's Disease. 2 (3), 189-198 (2012).
  8. Grandas, F., Galiano, M. L., Tabernero, C. Risk factors for levodopa-induced dyskinesias in Parkinson's disease. Journal of Neurology. 246 (12), 1127-1133 (1999).
  9. Schrag, A., Quinn, N. Dyskinesias and motor fluctuations in Parkinson's disease. A community-based study. Brain: A Journal of Neurology. 123, Pt 11 2297-2305 (2000).
  10. Bezard, E., Brotchie, J. M., Gross, C. E. Pathophysiology of levodopa-induced dyskinesia: potential for new therapies. Nature Reviews. Neuroscience. 2 (8), 577-588 (2001).
  11. Tronci, E., Shin, E., Björklund, A., Carta, M. Amphetamine-induced rotation and L-DOPA-induced dyskinesia in the rat 6-OHDA model: a correlation study. Neuroscience Research. 73 (2), 168-172 (2012).
  12. Duty, S., Jenner, P. Animal models of Parkinson's disease: a source of novel treatments and clues to the cause of the disease. British Journal of Pharmacology. 164 (4), 1357-1391 (2011).
  13. Ungerstedt, U. 6-Hydroxy-dopamine induced degeneration of central monoamine neurons. European Journal of Pharmacology. 5 (1), 107-110 (1968).
  14. Ungerstedt, U. Postsynaptic supersensitivity after 6-hydroxy-dopamine induced degeneration of the nigro-striatal dopamine system. Acta Physiologica Scandinavica. Supplementum. 367, 69-93 (1971).
  15. Kirik, D., Rosenblad, C., Bjorklund, A. Characterization of behavioral and neurodegenerative changes following partial lesions of the nigrostriatal dopamine system induced by intrastriatal 6-hydroxydopamine in the rat. Experimental Neurology. 152, 259-277 (1998).
  16. Zahm, D. S. Compartments in rat dorsal and ventral striatum revealed following injection of 6-hydroxydopamine into the ventral mesencephalon. Brain Research. 552 (1), 164-169 (1991).
  17. Padovan-Neto, F. E., Echeverry, M. B., Tumas, V., Del-Bel, E. A. Nitric oxide synthase inhibition attenuates L-DOPA-induced dyskinesias in a rodent model of Parkinson's disease. Neuroscience. 159 (3), 927-935 (2009).
  18. Padovan-Neto, F. E., et al. Antidyskinetic effect of the neuronal nitric oxide synthase inhibitor is linked to decrease of FosB/deltaFosB expression. Neuroscience Letters. 541, 126-131 (2013).
  19. Padovan-Neto, F. E., Cavalcanti-Kiwiatkoviski, R., Carolino, R. O., Anselmo-Franci, J., Del Bel, E. Effects of prolonged neuronal nitric oxide synthase inhibition on the development and expression of L-DOPA-induced dyskinesia in 6-OHDA-lesioned rats. Neuropharmacology. 89, 87-99 (2015).
  20. Winkler, C., Kirik, D., Björklund, A., Cenci, M. A. L-DOPA-induced dyskinesia in the intrastriatal 6-hydroxydopamine model of parkinson's disease: relation to motor and cellular parameters of nigrostriatal function. Neurobiology of Disease. 10 (2), 165-186 (2002).
  21. Francardo, V., et al. Impact of the lesion procedure on the profiles of motor impairment and molecular responsiveness to l-DOPA in the 6-hydroxydopamine mouse model of Parkinson's disease. Neurobiology of Disease. 42, 327-340 (2011).
  22. Lundblad, M., et al. Pharmacological validation of behavioural measures of akinesia and dyskinesia in a rat model of Parkinson's disease. The European Journal of Neuroscience. 15 (1), 120-132 (2002).
  23. Cenci, M. A., Lee, C. S., Björklund, A. L-DOPA-induced dyskinesia in the rat is associated with striatal overexpression of prodynorphin- and glutamic acid decarboxylase mRNA. The European Journal of Neuroscience. 10 (8), 2694-2706 (1998).
  24. Henry, B., Crossman, A. R., Brotchie, J. M. Characterization of enhanced behavioral responses to L-DOPA following repeated administration in the 6-hydroxydopamine-lesioned rat model of Parkinson's disease. Experimental Neurology. 151 (2), 334-342 (1998).
  25. Lee, C. S., Cenci, M. A., Schulzer, M., Björklund, A. Embryonic ventral mesencephalic grafts improve levodopa-induced dyskinesia in a rat model of Parkinson's disease. Brain: A Journal of Neurology. 123, Pt 7 1365-1379 (2000).
  26. Andersson, M., Hilbertson, A., Cenci, M. A. Striatal fosB expression is causally linked with l-DOPA-induced abnormal involuntary movements and the associated upregulation of striatal prodynorphin mRNA in a rat model of Parkinson's disease. Neurobiology of Disease. 6 (6), 461-474 (1999).
  27. Lindgren, H. S., Rylander, D., Ohlin, K. E., Lundblad, M., Cenci, M. A. The "motor complication syndrome" in rats with 6-OHDA lesions treated chronically with L-DOPA: relation to dose and route of administration. Behavioural Brain Research. 177 (1), 150-159 (2007).
  28. Animal Models of Movement Disorders: volume I, Neuromethods. Lane, E. L., Dunnett, S. 61, Springer Science+Business Media. (2011).
  29. Carlsson, T., Carta, M., Winkler, C., Björklund, A., Kirik, D. Serotonin neuron transplants exacerbate l-DOPA-induced dyskinesias in a rat model of Parkinson's disease. Journal of Neuroscience. 27 (30), 8011-8022 (2007).
  30. Lundblad, M., Picconi, B., Lindgren, H., Cenci, M. A. A model of L-DOPA-induced dyskinesia in 6-hydroxydopamine lesioned mice: relation to motor and cellular parameters of nigrostriatal function. Neurobiology of Disease. 16 (1), 110-123 (2004).
  31. Fasano, S., et al. Inhibition of Ras-guanine nucleotide-releasing factor 1 (Ras-GRF1) signaling in the striatum reverts motor symptoms associated with L-dopa-induced dyskinesia. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 107 (50), 21824-21829 (2010).
  32. Berton, O., et al. Striatal overexpression of DeltaJunD resets L-DOPA-induced dyskinesia in a primate model of Parkinson disease. Biological Psychiatry. 66 (6), 554-561 (2009).
  33. Lindgren, H. S., et al. Putaminal upregulation of FosB/ΔFosB-like immunoreactivity in Parkinson's disease patients with dyskinesia. Journal of Parkinson's Disease. 1 (4), 347-357 (2011).
  34. Rylander, D., et al. Maladaptive plasticity of serotonin axon terminals in levodopa-induced dyskinesia. Annals of Neurology. 68 (5), 619-628 (2010).
  35. Smith, R., et al. The role of pallidal serotonergic function in Parkinson's disease dyskinesias: a positron emission tomography study. Neurobiology of Aging. 36 (4), 1736-1742 (2015).
  36. Lundblad, M., et al. Pharmacological validation of a mouse model of l-DOPA-induced dyskinesia. Experimental Neurology. 194 (1), 66-75 (2005).
  37. Dekundy, A., Lundblad, M., Danysz, W., Cenci, M. A. Modulation of L-DOPA-induced abnormal involuntary movements by clinically tested compounds: further validation of the rat dyskinesia model. Behavioural Brain Research. 179 (1), 76-89 (2007).
  38. Blanchet, P. J., Konitsiotis, S., Chase, T. N. Amantadine reduces levodopa-induced dyskinesias in parkinsonian monkeys. Movement Disorders: Official Journal of the Movement Disorder Society. 13 (5), 798-802 (1998).
  39. Verhagen Metman, I., et al. Amantadine as treatment for dyskinesias and motor fluctuations in Parkinson's disease. Neurology. 50 (5), 1323-1326 (1998).
  40. Cenci, M. A., Lundblad, M. Ratings of L-DOPA-induced dyskinesia in the unilateral 6-OHDA lesion model of Parkinson's disease in rats and mice. Current Protocols in Neuroscience. , Chapter 9, Unit 9 25 (2007).
  41. Dupre, K. B., et al. Effects of coincident 5- HT1A receptor stimulation and NMDA receptor antagonism on L-DOPA-induced dyskinesia and rotational behaviors in the hemi-parkinsonian rat. Psychopharmacology (Berl). 199 (1), 99-108 (2008).
  42. Guimarães, P. R., Bariotto-dos-Santos, K., Ribeiro, D. L., Padovan-Neto, F. E. The 6-hydroxydopamine (6-OHDA) rat model of Parkinson's disease. Journal of Visualized Experiments: JoVE. , (2021).
  43. Paxinos, G., Watson, C. The Rat Brain in Stereotaxic Coordinates. , Academic Press. New York. (1998).
  44. Tseng, K. Y., et al. Inhibition of striatal soluble guanylyl cyclase-cGMP signaling reverses basal ganglia dysfunction and akinesia in experimental parkinsonism. PloS One. 6 (11), 27187 (2011).
  45. Padovan-Neto, F. E., et al. Selective regulation of 5-HT1B serotonin receptor expression in the striatum by dopamine depletion and repeated L-DOPA treatment: Relationship to L-DOPA-induced dyskinesias. Molecular Neurobiology. 57 (2), 736-751 (2020).
  46. Olsson, M., Nikkhah, G., Bentlage, C., Bjorklund, A. Forelimb akinesia in the rat Parkinson model: Differential effects of dopamine agonists and nigral transplants as assessed by a new stepping test. Journal of Neuroscience. 15, 3863-3875 (1995).
  47. Chang, J. W., Wachtel, S. R., Young, D., Kang, U. J. Biochemical and anatomical characterization of forepaw adjusting steps in rat models of Parkinson's disease lesions. Neuroscience. 88, 617-628 (1995).
  48. Jayasinghe, V. R., Flores-Barrera, E., West, A. R., Tseng, K. Y. Frequency-dependent corticostriatal disinhibition resulting from chronic dopamine depletion: Role of local striatal cGMP and GABAAR signaling. Cerebral Cortex. 27, 625-634 (2017).
  49. Picconi, B., et al. Loss of bidirectional striatal synaptic plasticity in L-DOPA-induced dyskinesia. Nature Neuroscience. 6 (5), 501-506 (2003).
  50. Carta, M., et al. Role of striatal L-DOPA in the production of dyskinesia in 6-hydroxydopamine lesioned rats. Journal of Neurochemistry. 96 (6), 1718-1727 (2006).
  51. Westin, J. E., Andersson, M., Lundblad, M., Cenci, M. A. Persistent changes in striatal gene expression induced by long-term L-DOPA treatment in a rat model of Parkinson's disease. The European Journal of Neuroscience. 14 (7), 1171-1176 (2001).
  52. Bariotto-Dos-Santos, K., et al. Repurposing an established drug: an emerging role for methylene blue in L-DOPA-induced dyskinesia. The European Journal of Neuroscience. 49 (6), 869-882 (2018).
  53. Lindgren, H. S., Lane, E. L. Rodent Models of l-DOPA-Induced Dyskinesia. Animal Models of Movement Disorders. Neuromethods. Lane, E., Dunnett, S. 61, Humana Press. (2011).
  54. Doucet, J., et al. Drug-drug interactions related to hospital admissions in older adults: A prospective study of 1000 patients. Journal of the American Geriatrics Society. 44, 944-948 (1996).
  55. Ohlin, K. E., et al. Vascular endothelial growth factor is upregulated by L-dopa in the parkinsonian brain: implications for the development of dyskinesia. Brain: A Journal of Neurology. 134, Pt 8 2339-2357 (2011).
  56. Jourdain, V. A., et al. Increased putamen hypercapnic vasoreactivity in levodopa-induced dyskinesia. JCI insight. 2 (20), 96411 (2017).
  57. Thiele, S. L., et al. Generation of a model of l-DOPA-induced dyskinesia in two different mouse strains. Journal of Neuroscience Methods. 197 (2), 193-208 (2011).
  58. Dos-Santos-Pereira, M., et al. Contributive role of TNF-α to L-DOPA-induced dyskinesia in a unilateral 6-OHDA lesion model of Parkinson's disease. Frontiers in Pharmacology. 11, 617085 (2021).
  59. Cenci, M. A., Ohlin, K. E., Odin, P. Current options and future possibilities for the treatment of dyskinesia and motor fluctuations in Parkinson's disease. CNS & Neurological Disorders Drug Targets. 10 (6), 670-684 (2011).
  60. Cenci, M. A. Presynaptic mechanisms of l-DOPA-induced dyskinesia: The findings, the debate, and the therapeutic implications. Frontiers in Neurology. 5, 242 (2014).
  61. Langston, J. W., Quik, M., Petzinger, G., Jakowec, M., Di Monte, D. A. Investigating levodopa-induced dyskinesias in the parkinsonian primate. Annals of Neurology. 47 (4), Suppl 1 79-89 (2000).
  62. Chase, T. N. Levodopa therapy: consequences of the nonphysiologic replacement of dopamine. Neurology. 50 (5), Suppl 5 17-25 (1998).

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Biologie Ausgabe 176 Parkinson-Krankheit Basalganglien 6-Hydroxydopamin L-DOPA-induzierte Dyskinesien abnorme unwillkürliche Bewegungen
Bewertung von L-DOPA-induzierten Dyskinesien im einseitig 6-OHDA-läsionierten Rattenmodell der Parkinson-Krankheit
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