JoVE Journal > Neuroscience
Summary
Abstract
Introduction
Protocol
Résultats
Discussion
Divulgations
Acknowledgements
Materials
References
Traduction automatique
Please note that all translations are automatically generated. Click here for the English version.
Neurosciences

Ön Talamusun Çekirdek Derin Beyin Stimülasyon sonra Sıçan Hippocampus Gen İfade Değişim Analizi

Published: March 08, 2015
doi:
10.3791/52457
, ,
1Department of Neurosurgery,Brigham & Women’s Hospital, Harvard Medical School, 2Division of Brain Sciences, Department of Medicine,Imperial College London

Summary

The mechanism underlying the therapeutic effects of Deep Brain Stimulation (DBS) surgery needs investigation. The methods presented in this manuscript describe an experimental approach to examine the cellular events triggered by DBS by analyzing the gene expression profile of candidate genes that can facilitate neurogenesis post DBS surgery.

Abstract

Derin beyin stimülasyonu (DBS) cerrahisi, örneğin bazal ganglionlar, talamus ve subtalamik bölgeler gibi beynin çeşitli bölgelerini hedefleyen, ilaca yanıt vermeyen birkaç hareket bozuklukları için etkili bir tedavidir. DBS cerrahisi alanında son gelişmeler morbid obezite, depresyon ve obsesif kompulsif bozukluk gibi çeşitli diğer koşullara bu cerrahi tekniğin uygulama genişletmek başladı. Bu genişleyen endikasyonlar rağmen, küçük DBS cerrahi yararlı etkilerini kolaylaştıran altta yatan fizyolojik mekanizmalar hakkında bilinmektedir. Bu sorunun bir yaklaşım, elektriksel stimülasyon almak nöronlarda gen ekspresyonu analiz etmektir. Daha önce yapılan çalışmalar, sıçan dentat girus bu nöron talamus 1 ön çekirdeğin hedef DBS ortaya olduğunu göstermiştir. ATN hedefleyen DBS cerrahi tedaviye dirençli epilepsi için yaygın olarak kullanılmaktadır. Bu nedenle çok interes aitBizim için t elektriksel ATN uyararak bağlı transkripsiyonel değişiklikleri keşfetmek için. Bu yazıda, erişkin erkek Wistar sıçanlarda ATN hedefleyen stereotaksi-güdümlü DBS cerrahisi için metodolojileri tarif. Ayrıca gen ekspresyonu değişimlerinin ölçülmesi için doku diseksiyon, RNA izolasyonu cDNA hazırlanması ve nicel RT-PCR için takip eden adımları tartışır. Bu yöntem, uygulanan ve yaygın olarak klinik olarak hedef bazal gangliyonlar ve beynin diğer bölgelere uyarılması için modifiye edilebilir. Burada tarif edilen gen ifadesi çalışması DBS mekanizması yönetmenlik olabilir moleküler oyuncular keşfetmek için bir aday hedef gen yaklaşımı varsayar.

Introduction

elektriksel beyin devrelerini uyarıcı olasılığı 2 araştırılmıştır zaman nöroşirürji tekniği olarak Derin Beyin Uyarım gelişiminin arkasındaki geçmişi 1870'lerin kadar uzanmaktadır. sinirsel bozuklukların tedavisi gibi kronik yüksek frekanslı stimülasyon kullanılması 1960'lı 3 başlamıştır. Daha sonra kronik implantasyonu DBS elektrotlar 4-6 gelişine 1990'larda, DBS tarafından tedavi edildi sinirsel bozuklukların sayısı artmaya devam etmiştir. Derin Beyin Stimülasyonu ilk esansiyel tremor 6 için bir tedavi olarak Amerika Birleşik Devletleri'nde kullanıldı. Bugün ameliyat halen farmakolojik müdahale ile tedavi edilemez olan nöronal bozuklukların tedavisinde yaygın olarak kullanılmaktadır. DBS anda, Parkinson hastalığı ve distoni 7-9 hareketi bozuklukları tedavi etmek için kullanılmıştır. Alzheimer tipi demans, Huntington hastalığı, epilepsi, ağrı ve nöropsikiyatrik hastalıklar, depresyon, obsesif kompulsif bozukluk, Tourette sendromu,7 sendromu ve bağımlılık DBS 10-12 ile tedaviye uygun koşullar bazılarıdır. DBS cerrahi FDA Parkinson hastalığı, distoni ve temel titreme tedavisi için onaylanmıştır birlikte, yukarıda sözü edilen diğer durumların tedavisi için DBS kullanılması, hastaların 13,14 çok umut vermektedir laboratuar çeşitli aşamalarında ve klinik çalışmalar bulunmaktadır.

Klinik, DBS cerrahi iki aşamada yapılır. Birinci aşama cerrahi radyolojik konumlandırma bir arada kullanarak hedeflenen anatomik konumda DBS elektrotlar konumlandırma içerir, CT, MRI yanı sıra gelişmiş hassasiyet için mikroelektrot okumaları. İkinci aşama, hastanın üst göğüste bir darbe jeneratörü implante içerir ve yükleme uzatma darbe jeneratör derisi açar. Nörolojik durumuna göre, darbe üreteci için birçok programlama düzenleri standardize edilmiş ve istenen gerilim teslim kullanılacaktır. Son volMinimal gerilimi 15 ile en iyi klinik yanıt alacak şekilde tage kademeli bir şekilde ulaşılır. Ancak, bizim çalışmalarda, kronik DBS implantların aksine basitlik uğruna, klinik olarak kullanılan, bizim hayvan modellerinde (1 saat), bir defalık yüksek frekanslı stimülasyon okuyan başvurdular.

Bizim grubun araştırma Parça tedaviye dirençli epilepsi için DBS cerrahisi kullanımını araştıran üzerinde duruluyor. Yüksek frekanslı stimülasyon ile Stereotaktik cerrahi yaklaşımlar epilepsi 10,16,17 tüm insidansı yaklaşık% 30'unu oluşturmaktadır medikal-dirençli epilepsi tedavisi için etkili bir seçenek olarak diğerleri tarafından incelenmiştir. Derin serebellar çekirdekler hem de kortikal yüzey hedefleme serebellar uyarım epilepsi 10,18,19 tedavisi için hedef olarak geçmişte kullanılmıştır. Buna ek olarak, hipokampus uyarımı da denedim ama karışık sonuçlar 20,21 ile olmuştur. Diğer Bazı incelenmiştirEpilepsi için DBS hedefleri serebral korteks, talamus, subtalamik nukleus ve vagus siniri 8 bulunmaktadır. Ancak, son birkaç yıl içinde çeşitli çalışmalar aşağıdaki sonuçları, ön talamik nükleus (ATN) epilepsi tedavisi 10,22 için en yaygın DBS hedef olarak ortaya çıkmıştır. Nöroanatomik devresi ve hayvan modellerinde elde edilen bulgular hakkında bilgilere dayanarak, çeşitli çalışmalar epilepsi 23-26 tedavisinde ATN derin beyin stimülasyonu tedavi edici etkisi üzerinde yoğunlaşmıştır. ATN limbik devrenin parçasıdır ve nöbet sıklığı etki beyin bölgesinde yer almaktadır. Tarafından Hamani ark. Çalışmalar, bir pilokarpin kaynaklı epilepsi modelinde ATN-DBS etkinliğini test edilmiş ve ikili ATN stimülasyon pilokarpin kaynaklı nöbetler ve status epileptikus 24 gecikmeleri uzamış bulduk. Ayrıca, ATN yüksek frekanslı stimülasyon ep bir Pentilentetrazol (PTZ) modelinde nöbet sıklığını azaltmak için bulunmuştur25,27-29 ilepsy. Lee ve ark., Geçmeyen kısmi epilepsi 30 iyileştirilmesinde ATN kronik derin beyin uyarımı üzerine yaklaşık% 75 nöbet sıklığında ortalama azalma bildirilmiştir.

Tedaviye dirençli epilepsi üzerine yeni bir klinik çalışmada ön talamik nükleus (ATN) 22 hedef DBS ameliyat sonrası umut verici sonuçlar göstermiştir. Tedaviye dirençli epilepsi (SANTE deneme) için ATN ikili DBS uygulanan 110 hasta ile bir çok merkezli randomize klinik çalışma yaklaşık% 40 31 kadar nöbet sıklığında bir düşüş göstermiştir. Bu çalışmanın sonuçları da 2-3 ay sonra ameliyat gözlenen gecikmiş optimum bir anti-epileptik etkisi ima etti. Toda ve arkadaşları tarafından ileri çalışmalar., Onlar hayvan modellerinde 1 bir sonraki zaman sonrası DBS (gün 3-5) oluyor nörogenezi gösterdi nerede bu bulgular ile doğrulanmıştır. Buna ek olarak, Encinas ve diğ., Hipokampal neurogene bildirmiştirATN 32 yüksek frekanslı stimülasyon sonra erişkin fare dentat girus sis. Önceki çalışmalar 33-35 gibi kronik temporal lob epilepsisi ve öğrenme açıkları ile bir dernek, hafıza bozukluğu ve spontan tekrarlayan nöbetler motorlu gibi bazı epileptik durumlarda hipokampal nöron düşüş bildirdi. Ayrıca, bu tür hayvan modelleri 33 kronik epileptik hipokampus FGF2 ve IGF-1 nöral kök hücre progenitör faktörleri bir azalma oldu. Bu göz önüne alındığında, dentat girus nöron bir büyüklüğe göstermek gibi DBS gibi girişimsel stratejileri araştırma için heyecan verici yollar vardır. Bu bulgular epilepsi mekanizması altında yatan nöron sonrası DBS tedaviye daha derinden keşfetmek için bizi teşvik etmiştir. Biz (temsilci sonuçlarında) (veri rapor değil) yanı sıra ikili hem tek taraflı ATN hedefli ve sıçan dentat girus görülen yüksek nörotrofın (BDNF) ifadesi var. Bizim ceçerli hipotezi BDNF ifadesi DBS cerrahi anti-epileptik etkisi çevirir nöron ile sonuçlanacak bir gen ifadesi zincirini başlatır olmasıdır. Bu yazıda, DBS faydalarını altında yatan mekanizma çalışmak için cazip bir yaklaşım olarak gen ifadesi analizi ile takip sıçanlarda ATN hedefleyen DBS ameliyat için bizim yöntemleri sunuyoruz.

Protocol

NOT: Etik Açıklama: Bu yazıda ele tüm işlemler (Laboratuvar Hayvanları Bakım ve Kullanım Kılavuzu için) Hayvan Araştırma NIH kurallarına uygun ve Harvard Tıp Fakültesi IACUC Komitesi tarafından onaylanmıştır. 1. Ön cerrahi hazırlanması Tüm cerrahi aletler ya otoklav ile veya gerektiğinde antiseptik solüsyon ve / veya etanol ile temizlik sterilize emin olun. Mümkünse, bu tür neşter, iğne ve şırıngalar gibi steril tek kullanımlık ekipman kullanın….

Representative Results

Şekil 1A ve 1B, kontrol geni β-aktin için BDNF ve GABRD izafi ifadesi olduğunu gösterir. BDNF, bir nörotrofinin genellikle birçok nöronal hastalıklar 38-41 nöroprotektif etkileri ile ilişkilidir. Epileptik hastalara terapötik fayda sağlar ATN uyarılmaya yanıt olarak BDNF tanımlama profili analiz etmek ilginçtir. Belirtilen zaman noktalarında BDNF gen ifadesi profilini gösterir Şekil 1A DBS stimülasyon sonrası, BDNF up-regülasyonu 3 saat…

Discussion

Benabid ark dönüm çalışmanın ardından. Parkinson hastalığı ve esansiyel tremor tedavisi için derin beyin stimülasyonu kullanarak, DBS cerrahi teknik, birçok nörolojik bozukluklar 6,10,43 tedavisinde son on yılda çok ilgi ile incelenmiştir. Beyin devrelerinin çeşitli nöro-anatomik bölgeleri hedefleyen DBS çalışmalar halen büyük bir sinirsel hastalıklar ele için birçok gruplar tarafından gerçekleştirilen ve klinik çalışmaların çeşitli aşamalarında içind…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We are grateful for the support of the NREF foundation.

Materials

Deep Brain Stimulation Surgery
Reagent/Equipment Vendor Name Catalog No.  Comments
Stereotactic frame Kopf Instruments Model 900
Drill  Dremmel 7700, 7.2 V
Scalpel BD 372610
Ketamine Patterson Veterinary 07-803-6637 Schedule III Controlled Substance, procurement, use and storage according to institutional rules
Xylazine Patterson Veterinary 07-808-1947
Buprenorphine Patterson Veterinary 07-850-2280 Schedule III Controlled Substance, procurement, use and storage according to institutional rules
Surgical staples ConMed Corporation 8035
Sutures (3-0)  Harvard Apparatus 72-3333
Syringe (1 ml, 29 1/2 G) BD 329464 Sterile, use for Anesthesia administration intraperitoneally
Syringe (3 ml, 25 G) BD 309570 Sterile, use for Analgesia administration subcutaneously
Needles BD 305761 Sterile, use for clearing broken bone pieces from the burr holes
Ethanol Fisher Scientific S25309B Use for general sterilization 
Eye Lubricant Fisher Scientific 19-898-350
Stimulator Medtronic Model 3628
DBS electrodes Rhodes Medical Instruments, CA SNEX100x-100mm Electrodes are platinum, concentric and bipolar
Betadine (Povidone-Iodine)  PDI S23125 Single use swabsticks, use for sterilizing the scalp before making incision 
 Brain Dissection and Hippocampal tissue isolation
Reagent/Equipment Vendor Name Catalog No.  Comments
Acrylic Rodent Brain Matrix Electron Microscopy Sciences 175-300 www.emsdiasum.com
Razor Blade V W R 55411-050
Guillotine Scissors Clauss 18039 For decapitation, make sure these scissors are maintained in clean and working condition
Scissors Codman Classic 34-4098 Use for removing the brain from the skull
Forceps Electron Microscopy Sciences 72957-06 Use for removing the brain from the skull and for handling during dissection
Phosphate Buffered Saline  Boston Bioproducts BM-220
 RNA Extraction and cDNA Preparation
Reagent/Equipment Vendor Name Catalog No.  Comments
Tri Reagent Sigma T9424 Always use in a fume hood and wear protective goggles while handling; avoid contact with skin
Syringe (3 ml, 25 G) BD 309570 Use for tissue homogenization
Chloroform Fisher Scientific BP1145-1 Always use in a fume hood and wear protective goggles while handling; avoid contact with skin
Isopropanol Fisher Scientific A416-1
Glycogen Thermo Scientific R0561
Dnase I Kit Ambion AM1906
Superscript First Strand Synthesis Kit Invitrogen 11904-018
Tabletop Microcentrifuge Eppendorf 5415D
 Quantitative PCR               
Reagent/Equipment Vendor Name Catalog No.  Comments
SYBR Green PCR Kit Qiagen 204143
Custom Oligos Invitrogen 10668051
PCR Plates (96 wells) Denville Scientific C18080-10
Optical Adhesive Sheets Thermo Scientific AB1170
Nuclease free Water Thermo Scientific SH30538-02
Real Time PCR Machine Applied Biosystems 7500
DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Toda, H., Hamani, C., Fawcett, A. P., Hutchison, W. D., Lozano, A. M. The regulation of adult rodent hippocampal neurogenesis by deep brain stimulation. Journal of. 108, 132-138 (2008).
  2. Perlmutter, J. S., Mink, J. W. Deep brain stimulation. Annual review of neuroscience. 29, 229-257 (2006).
  3. Bergstrom, M. R., Johansson, G. G., Laitinen, L. V., Sipponen, P. Electrical stimulation of the thalamic and subthalamic area in cerebral palsy. Acta physiologica Scandinavica. 67, 208-213 (1966).
  4. Benabid, A. L., et al. Chronic electrical stimulation of the ventralis intermedius nucleus of the thalamus as a treatment of movement disorders. Journal of neurosurgery. 84, 203-214 (1996).
  5. Benabid, A. L., et al. Long-term electrical inhibition of deep brain targets in movement disorders. Movement disorders : official journal of the Movement Disorder Society. 13, 119-125 (1998).
  6. Benabid, A. L., et al. Long-term suppression of tremor by chronic stimulation of the ventral intermediate thalamic nucleus. Lancet. 337, 403-406 (1991).
  7. Tierney, T. S., Lozano, A. M. Surgical treatment for secondary dystonia. Movement disorders : official journal of the Movement Disorder Society. 27, 1598-1605 (2012).
  8. Tierney, T. S., Sankar, T., Lozano, A. M. Some recent trends and further promising directions in functional neurosurgery. Acta neurochirurgica. Supplement. 117, 87-92 (2013).
  9. Tierney, T. S., Sankar, T., Lozano, A. M. Deep brain stimulation emerging indications. Progress in brain research. 194, 83-95 (2011).
  10. Sankar, T., Tierney, T. S., Hamani, C. Novel applications of deep brain stimulation. Surgical neurology international. 3, S26-S33 (2012).
  11. Tierney, T. S., Vasudeva, V. S., Weir, S., Hayes, M. T. Neuromodulation for neurodegenerative conditions. Frontiers in bioscience. 5, 490-499 (2013).
  12. Mayberg, H. S., et al. Deep brain stimulation for treatment-resistant depression. Neuron. 45, 651-660 (2005).
  13. Lyons, M. K. Deep brain stimulation: current and future clinical applications. Mayo Clinic proceedings. 86, 662-672 (2011).
  14. Lansek, R., Morris, M. E. Ch. 4. Rehabilitation in movement disorders. , 36-43 (2013).
  15. Goodwin, R., Tierney, T., Lenz, F., Anderson, W., Fried, I., Rutishauser, U., Cerf, M., Kreiman, G. Ch. 15. Single Neuron Studies of the Human Brain: Probing Cognition. 15, 275-293 (2014).
  16. Hauser, W. A. Epidemiology of epilepsy in children. Neurosurgery clinics of North America. 6, 419-429 (1995).
  17. Hauser, W. A. Recent developments in the epidemiology of epilepsy. Acta neurologica Scandinavica. Supplementum. 162, 17-21 (1995).
  18. Davis, R., Emmonds, S. E. Cerebellar stimulation for seizure control: 17-year study. Stereotactic and functional neurosurgery. 58, 200-208 (1992).
  19. Levy, L. F., Auchterlonie, W. C. Chronic cerebellar stimulation in the treatment of epilepsy. Epilepsia. 20, 235-245 (1979).
  20. Velasco, A. L., et al. Electrical stimulation of the hippocampal epileptic foci for seizure control: a double-blind, long-term follow-up study. Epilepsia. 48, 1895-1903 (2007).
  21. Tellez-Zenteno, J. F., McLachlan, R. S., Parrent, A., Kubu, C. S., Wiebe, S. Hippocampal electrical stimulation in mesial temporal lobe epilepsy. Neurology. 66, 1490-1494 (2006).
  22. Kerrigan, J. F., et al. Electrical stimulation of the anterior nucleus of the thalamus for the treatment of intractable epilepsy. Epilepsia. 45, 346-354 (2004).
  23. Hamani, C., et al. Deep brain stimulation of the anterior nucleus of the thalamus: effects of electrical stimulation on pilocarpine-induced seizures and status epilepticus. Epilepsy research. 78, 117-123 (2008).
  24. Hamani, C., et al. Bilateral anterior thalamic nucleus lesions and high-frequency stimulation are protective against pilocarpine-induced seizures and status epilepticus. Neurosurgery. 54, 191-195 (2004).
  25. Mirski, M. A., Rossell, L. A., Terry, J. B., Fisher, R. S. Anticonvulsant effect of anterior thalamic high frequency electrical stimulation in the rat. Epilepsy research. 28, 89-100 (1997).
  26. Mirski, M. A., Ferrendelli, J. A. Interruption of the mammillothalamic tract prevents seizures in guinea pigs. Science. 226, 72-74 (1984).
  27. Mirski, M. A., Ferrendelli, J. A. Anterior thalamic mediation of generalized pentylenetetrazol seizures. Brain research. 399, 212-223 (1986).
  28. Mirski, M. A., Ferrendelli, J. A. Interruption of the connections of the mammillary bodies protects against generalized pentylenetetrazol seizures in guinea pigs. The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience. 7, 662-670 (1987).
  29. Mirski, M. A., McKeon, A. C., Ferrendelli, J. A. Anterior thalamus and substantia nigra: two distinct structures mediating experimental generalized seizures. Brain research. 397, 377-380 (1986).
  30. Lee, K. J., Jang, K. S., Shon, Y. M. Chronic deep brain stimulation of subthalamic and anterior thalamic nuclei for controlling refractory partial epilepsy. Acta neurochirurgica. Supplement. 99, 87-91 (2006).
  31. Fisher, R., et al. Electrical stimulation of the anterior nucleus of thalamus for treatment of refractory epilepsy. Epilepsia. 51, 899-908 (2010).
  32. Encinas, J. M., Hamani, C., Lozano, A. M., Enikolopov, G. Neurogenic hippocampal targets of deep brain stimulation. The Journal of comparative neurology. 519, 6-20 (2011).
  33. Hattiangady, B., Rao, M. S., Shetty, A. K. Chronic temporal lobe epilepsy is associated with severely declined dentate neurogenesis in the adult hippocampus. Neurobiology of disease. 17, 473-490 (2004).
  34. Kuruba, R., Hattiangady, B., Shetty, A. K. Hippocampal neurogenesis and neural stem cells in temporal lobe epilepsy. Epilepsy & behavior : E&B. 14, 65-73 (2009).
  35. Hattiangady, B., Shetty, A. K. Implications of decreased hippocampal neurogenesis in chronic temporal lobe epilepsy. Epilepsia. 49, 26-41 (2008).
  36. Paxinos, G., Watson, C. . The Rat Brain in Stereotaxic Coordinates. , (2007).
  37. Livak, K. J., Schmittgen, T. D. Analysis of Relative Gene Expression Data Using Real-Time Quantitative PCR and the 22DDCT Method. METHODS. 25, 402-408 (2001).
  38. Kells, A. P., et al. AAV-mediated gene delivery of BDNF or GDNF is neuroprotective in a model of Huntington disease. Molecular therapy : the journal of the American Society of Gene Therapy. 9, 682-688 (2004).
  39. Han, B. H., Holtzman, D. M. BDNF protects the neonatal brain from hypoxic-ischemic injury in vivo via the ERK pathway. The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience. 20, 5775-5781 (2000).
  40. Hetman, M., Kanning, K., Cavanaugh, J. E., Xia, Z. Neuroprotection by brain-derived neurotrophic factor is mediated by extracellular signal-regulated kinase and phosphatidylinositol 3-kinase. The Journal of biological chemistry. 274, 22569-22580 (1999).
  41. Stadelmann, C., et al. BDNF and gp145trkB in multiple sclerosis brain lesions: neuroprotective interactions between immune and neuronal cells. Brain : a journal of neurology. 125, 75-85 (2002).
  42. Treiman, D. M. GABAergic mechanisms in epilepsy. Epilepsia. 42, 8-12 (2001).
  43. Benabid, A. L., Pollak, P., Louveau, A., Henry, S., de Rougemont, J. Combined (thalamotomy and stimulation) stereotactic surgery of the VIM thalamic nucleus for bilateral Parkinson disease. Applied neurophysiology. 50, 344-346 (1987).
  44. Laxton, A. W., et al. A phase I trial of deep brain stimulation of memory circuits in Alzheimer’s disease. Annals of. 68, 521-534 (2010).
  45. Tierney, T. S., Abd-El-Barr, M. M., Stanford, A. D., Foote, K. D., Okun, M. S. Deep brain stimulation and ablation for obsessive compulsive disorder: evolution of contemporary indications, targets and techniques. The International journal of neuroscience. 124, 394-402 (2014).
  46. Kennedy, S. H., et al. Deep brain stimulation for treatment-resistant depression: follow-up after 3 to 6 years. The American journal of psychiatry. 168, 502-510 (2011).
  47. Lozano, A. M., et al. Subcallosal cingulate gyrus deep brain stimulation for treatment-resistant depression. Biological psychiatry. 64, 461-467 (2008).
  48. Ackermans, L., et al. Double-blind clinical trial of thalamic stimulation in patients with Tourette syndrome. Brain : a journal of neurology. 134, 832-844 (2011).
  49. Houeto, J. L., et al. Tourette’s syndrome and deep brain stimulation. Journal of neurology, neurosurgery, and psychiatry. 76, 992-995 (2005).
  50. Maciunas, R. J., et al. Prospective randomized double-blind trial of bilateral thalamic deep brain stimulation in adults with Tourette syndrome. Journal of neurosurgery. 107, 1004-1014 (2007).
  51. Koning, P. P., Figee, M., van den Munckhof, P., Schuurman, P. R., Denys, D. Current status of deep brain stimulation for obsessive-compulsive disorder: a clinical review of different targets. Current psychiatry reports. 13, 274-282 (2011).
  52. Greenberg, B. D., et al. Deep brain stimulation of the ventral internal capsule/ventral striatum for obsessive-compulsive disorder: worldwide experience. Molecular psychiatry. 15, 64-79 (2010).
  53. Muller, U. J., et al. Successful treatment of chronic resistant alcoholism by deep brain stimulation of nucleus accumbens: first experience with three cases. Pharmacopsychiatry. 42, 288-291 (2009).
  54. Zhou, H., Xu, J., Jiang, J. Deep brain stimulation of nucleus accumbens on heroin-seeking behaviors: a case report. Biological psychiatry. 69, e41-e42 (2011).
  55. Porta, M., et al. Thalamic deep brain stimulation for treatment-refractory Tourette syndrome: two-year outcome. Neurology. 73, 1375-1380 (2009).
  56. Younce, J. R., Albaugh, D. L., Shih, Y. Y. Deep brain stimulation with simultaneous FMRI in rodents. Journal of visualized experiments : JoVE. , e51271 (2014).
  57. Park, P. J. ChIP-seq: advantages and challenges of a maturing technology. Nature reviews. Genetics. 10, 669-680 (2009).
  58. Valouev, A., et al. Genome-wide analysis of transcription factor binding sites based on ChIP-Seq data. Nature methods. 5, 829-834 (2008).
  59. Fiore, R., Siegel, G., Schratt, G. MicroRNA function in neuronal development, plasticity and disease. Biochimica et biophysica acta. 1779, 471-478 (2008).
  60. Hebert, S. S., De Strooper, B. Alterations of the microRNA network cause neurodegenerative disease. Trends in neurosciences. 32, 199-206 (2009).

Tags

Keywords: Gene ExpressionDeep Brain StimulationAnterior Thalamic NucleusRat HippocampusQuantitative RT-PCRStereotactic SurgeryNeurogenesisEpilepsyBasal Ganglia
check_url/fr/52457?article_type=t

Play Video
PDF
DOI
DOWNLOAD MATERIALS LIST
Citer Cet Article
Selvakumar, T., Alavian, K. N., Tierney, T. Analysis of Gene Expression Changes in the Rat Hippocampus After Deep Brain Stimulation of the Anterior Thalamic Nucleus. J. Vis. Exp. (97), e52457, doi:10.3791/52457 (2015).
Télécharger la Citation
Réimpressions et Autorisations

View Video

✖

To prove you're not a robot, please enter the text in the image below

CAPTCHA Image
Play CAPTCHA Audio
Refresh Image