Summary

Analyse av genuttrykk Endringer i Rat Hippocampus Etter dyp hjernestimulering av fremre talamiske Nucleus

Published: March 08, 2015
doi:

Summary

The mechanism underlying the therapeutic effects of Deep Brain Stimulation (DBS) surgery needs investigation. The methods presented in this manuscript describe an experimental approach to examine the cellular events triggered by DBS by analyzing the gene expression profile of candidate genes that can facilitate neurogenesis post DBS surgery.

Abstract

Dyp hjernestimulering (DBS) kirurgi, målretting ulike regioner av hjernen som basalgangliene, thalamus, og subthalamic regioner, er en effektiv behandling for flere bevegelsesforstyrrelser som ikke har respondert på medisinering. Nylige fremskritt innen DBS kirurgi har begynt å utvide anvendelsen av denne kirurgiske teknikken til andre forhold så forskjellige som sykelig fedme, depresjon og tvangslidelser. Til tross for disse voksende indikasjoner, lite er kjent om de underliggende fysiologiske mekanismer som letter de gunstige effektene av DBS kirurgi. En tilnærming til dette spørsmålet er genekspresjonsanalyser å utføre i nevroner som mottar elektrisk stimulering. Tidligere studier har vist at nevrogenesen i rotte dentate gyrus utløses i DBS målretting av fremre kjernen i thalamus 1. DBS kirurgi rettet mot ATN brukes mye for behandling ildfast epilepsi. Det er derfor av mye interest for oss å utforske transkripsjons endringer indusert av elektrisk stimulering av ATN. I dette manuskriptet, beskriver vi våre metoder for stereotaktisk styrt DBS kirurgi rettet mot ATN hos voksne mannlige Wistar rotter. Vi diskuterer også de påfølgende trinnene for vev disseksjon, RNA isolering, cDNA forberedelse og kvantitativ RT-PCR for å måle genuttrykk endringer. Denne metoden kan bli anvendt og modifisert for å stimulere de basale ganglier og andre områder av hjernen som vanligvis klinisk målrettet. Genuttrykket studien beskrevet her forutsetter en kandidat målgen tilnærming for å oppdage molekylære spillere som kunne dirigere mekanismen for DBS.

Introduction

Historien bak utviklingen av dyp hjernestimulering som en nevrokirurgisk teknikk dateres tilbake til 1870-tallet da muligheten for elektrisk stimulere hjernen kretser ble utforsket to. Bruken av kronisk høy frekvens stimulering som behandling for nevronale lidelser startet i 1960 tre. Senere på 1990-tallet med bruk av kronisk implantasjon DBS elektroder 4-6, fortsatte antall nevronale lidelser som ble behandlet av DBS å øke. Dyp hjernestimulering ble først brukt i USA som en behandling for essensiell tremor 6. I dag er kirurgi er brukt mye til å behandle nervelidelser som for øyeblikket er botemiddel ved farmakologisk intervensjon. DBS i dag brukes for å behandle problemer på Parkinsons sykdom og dystoni 7-9. Alzheimers type demens, Huntingtons sykdom, epilepsi, smerte og nevropsykiatriske sykdommer, slik depresjon, OCD, Tourettes7; s syndrom og avhengighet er noen av de forholdene som kan behandles ved DBS 10-12. Mens DBS kirurgi er godkjent av FDA for behandling av Parkinsons sykdom, dystoni og essensiell tremor, bruk av DBS for behandling av andre tilstander som er nevnt ovenfor er i forskjellige faser av lab og kliniske studier som gir mye løftet til pasienter 13,14.

Klinisk er DBS operasjonen utføres i to trinn. Den første fasen innebærer kirurgisk plassere DBS elektroder på målrettet anatomisk plassering ved hjelp av en kombinasjon av radiologisk posisjonering, CT, MR samt microelectrode avlesninger for økt presisjon. Det andre trinn involverer å implantere en pulsgenerator i pasientens øvre bryst og installering av skjøteledninger fra hodebunnen til pulsgeneratoren. Basert på den nevrologisk tilstand, har flere programmeringsskjemaer for pulsgeneratoren blitt standardisert og vil bli brukt for å levere den ønskede spenning. Den endelige voltage er nådd i en stegvis slik som å motta den beste klinisk respons med minimal spenning 15. Men i våre studier, i motsetning til den kroniske DBS implantater anvendes klinisk, for enkelhets skyld har vi tydd til å studere en engangs høyfrekvent stimulering (1 time) i våre dyremodeller.

En del av vår gruppe forskning fokuserer på å undersøke bruk av DBS kirurgi for behandling-refraktær epilepsi. Stereotaktisk kirurgiske tilnærminger ved hjelp av høyfrekvent stimulering har blitt utforsket av mange andre som et effektivt alternativ for å behandle medisinsk-refraktær epilepsi som utgjør ca 30% av alle tilfeller av epilepsi 10,16,17. Lillehjernen stimulering rettet kortikale overflate samt de dype cerebellare atomkjerner har blitt brukt i fortiden som mål å behandle epilepsi 10,18,19. I tillegg har hippocampus stimulering også blitt forsøkt, men med blandede resultater 20,21. Noen av de andre undersøkteDBS mål for epilepsi inkluderer hjernebarken, thalamus, subthalamic nucleus og vagus nerve 8. Men følgende resultater fra flere studier de siste årene, har den fremre thalamic kjernen (ATN) dukket opp som den mest vanlige DBS mål for epilepsi behandling 10,22. Basert på kunnskap om nevroanatomi kretser og resultatene fra dyremodeller, har flere studier rettet mot den terapeutiske effekten av dyp hjerne stimulering av ATN i behandling av epilepsi 23-26. ATN er en del av det limbiske krets og ligger i regionen av hjernen som påvirker anfallsfrekvens. Studier av Hamani et al., Har testet effekten av ATN-DBS i en pilokarpin indusert epilepsi modell og fant at bilateral ATN stimulering forlenget latenstid for pilokarpin-induserte anfall og status epilepticus 24. Videre ble høyfrekvent stimulering av ATN funnet å redusere anfallsfrekvens i en pentylentetrazol (PTZ) modell av epilepsy 25,27-29. Lee et al., Har rapportert en gjennomsnittlig reduksjon i anfallsfrekvens med om lag 75% ved kronisk dyp hjernestimulering av ATN i behandling ildfast partiell epilepsi 30.

En fersk klinisk studie på behandling-refraktær epilepsi har vist lovende resultater etter DBS kirurgi rettet mot fremre thalamic kjernen (ATN) 22. En multisenter randomisert klinisk studie med 110 pasienter som gjennomgår bilateral DBS av ATN for behandling refraktær epilepsi (SANTE rettssaken) indikerte en nedgang i anfallsfrekvens med ca 40% 31. Resultatene fra denne studien også antydet på en forsinket optimal antiepileptisk effekt observert på 2-3 måneder etter operasjonen. Videre studier av Toda et al., Bekreftet med disse funnene der de demonstrerte neurogenesis skjer på et senere tidspunkt etter DBS (dager 3-5) i dyremodeller 1. I tillegg Encinas et al., Har rapportert hippocampus neurogenesis i voksen mus dentate gyrus etter høyfrekvent stimulering av ATN 32. Tidligere studier 33-35 har rapportert fallende hippocampus neurogenesis i visse epileptiske tilfeller som kronisk tinninglappen epilepsi og en tilknytning til lærings underskudd, svekket hukommelse og spontane tilbakevendende motoriske anfall. Videre var det en reduksjon i nervestamcelle progenitor faktorer som FGF2 og IGF-1 i kronisk epileptisk hippocampus i dyremodeller 33. Vurderer dette, intervensjonsstrategier som DBS som viser en styrking av neurogenesis i dentate gyrus er spennende muligheter for forskning. Disse funnene har oppmuntret oss til å utforske videre dypt inn i mekanismen som ligger bak neurogenesis post-DBS behandling for epilepsi. Vi har målrettet ATN både ensidig (data ikke rapportert) samt bilateralt (i representative resultater) og sett forhøyet neurotrofin (BDNF) uttrykk i rotte dentate gyrus. Vår cjeldende hypotese er at BDNF uttrykk initierer en genuttrykk kaskade som kulminerer i neurogenesis som oversetter til antiepileptisk effekt av DBS kirurgi. I denne artikkelen presenterer vi våre metoder for DBS kirurgi rettet mot ATN hos rotter fulgt genekspresjonsanalyser med som en attraktiv tilnærming for å studere mekanismen bak fordelene med DBS.

Protocol

MERK: Etikk Uttalelse: Alle prosedyrer diskutert i dette manuskriptet er i samsvar med NIH retningslinjer for Forsøksdyrutvalget (Guide for omsorg og bruk av forsøksdyr) og er godkjent av Harvard Medical School IACUC komiteen. 1. Pre-kirurgisk Forberedelse Kontroller at alle kirurgiske instrumenter er sterilisert ved enten autoklave eller ved rensing med antiseptisk løsning og / eller etanol som nødvendig. Der det er mulig, bruker sterilt engangsutstyr som skalpeller, nål og …

Representative Results

Figurene 1A og 1B viser den relative ekspresjon av BDNF og GABRD i forhold til kontrollgenet β-aktin. BDNF, er et neurotrofin ofte forbundet med nevrobeskyttende effekter i mange nevronale sykdommer 38-41. Det er derfor interessant å analysere ekspresjonen profilen til BDNF i respons til stimulering av ATN som gir terapeutiske fordeler til epileptiske pasienter. I figur 1A, som viser genekspresjon profilen til BDNF på tvers av de indikerte tidspunktene leg…

Discussion

Etter landemerke arbeid av Benabid et al. I å bruke dyp hjernestimulering for å behandle Parkinsons sykdom og essensiell tremor, har DBS kirurgiske teknikken blitt undersøkt med mye interesse det siste tiåret til å behandle mange nevrologiske lidelser 6,10,43. DBS-studier rettet mot forskjellige nevro-anatomiske regioner av hjernen kretsene er for tiden utført av mange grupper for å løse viktige neuronale sykdommer, og er i forskjellige faser av kliniske forsøk. Stimulering av subthalamic kj…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We are grateful for the support of the NREF foundation.

Materials

Deep Brain Stimulation Surgery
Reagent/Equipment Vendor Name Catalog No.  Comments
Stereotactic frame Kopf Instruments Model 900
Drill  Dremmel 7700, 7.2 V
Scalpel BD 372610
Ketamine Patterson Veterinary 07-803-6637 Schedule III Controlled Substance, procurement, use and storage according to institutional rules
Xylazine Patterson Veterinary 07-808-1947
Buprenorphine Patterson Veterinary 07-850-2280 Schedule III Controlled Substance, procurement, use and storage according to institutional rules
Surgical staples ConMed Corporation 8035
Sutures (3-0)  Harvard Apparatus 72-3333
Syringe (1 ml, 29 1/2 G) BD 329464 Sterile, use for Anesthesia administration intraperitoneally
Syringe (3 ml, 25 G) BD 309570 Sterile, use for Analgesia administration subcutaneously
Needles BD 305761 Sterile, use for clearing broken bone pieces from the burr holes
Ethanol Fisher Scientific S25309B Use for general sterilization 
Eye Lubricant Fisher Scientific 19-898-350
Stimulator Medtronic Model 3628
DBS electrodes Rhodes Medical Instruments, CA SNEX100x-100mm Electrodes are platinum, concentric and bipolar
Betadine (Povidone-Iodine)  PDI S23125 Single use swabsticks, use for sterilizing the scalp before making incision 
 Brain Dissection and Hippocampal tissue isolation
Reagent/Equipment Vendor Name Catalog No.  Comments
Acrylic Rodent Brain Matrix Electron Microscopy Sciences 175-300 www.emsdiasum.com
Razor Blade V W R 55411-050
Guillotine Scissors Clauss 18039 For decapitation, make sure these scissors are maintained in clean and working condition
Scissors Codman Classic 34-4098 Use for removing the brain from the skull
Forceps Electron Microscopy Sciences 72957-06 Use for removing the brain from the skull and for handling during dissection
Phosphate Buffered Saline  Boston Bioproducts BM-220
 RNA Extraction and cDNA Preparation
Reagent/Equipment Vendor Name Catalog No.  Comments
Tri Reagent Sigma T9424 Always use in a fume hood and wear protective goggles while handling; avoid contact with skin
Syringe (3 ml, 25 G) BD 309570 Use for tissue homogenization
Chloroform Fisher Scientific BP1145-1 Always use in a fume hood and wear protective goggles while handling; avoid contact with skin
Isopropanol Fisher Scientific A416-1
Glycogen Thermo Scientific R0561
Dnase I Kit Ambion AM1906
Superscript First Strand Synthesis Kit Invitrogen 11904-018
Tabletop Microcentrifuge Eppendorf 5415D
 Quantitative PCR               
Reagent/Equipment Vendor Name Catalog No.  Comments
SYBR Green PCR Kit Qiagen 204143
Custom Oligos Invitrogen 10668051
PCR Plates (96 wells) Denville Scientific C18080-10
Optical Adhesive Sheets Thermo Scientific AB1170
Nuclease free Water Thermo Scientific SH30538-02
Real Time PCR Machine Applied Biosystems 7500

References

  1. Toda, H., Hamani, C., Fawcett, A. P., Hutchison, W. D., Lozano, A. M. The regulation of adult rodent hippocampal neurogenesis by deep brain stimulation. Journal of. 108, 132-138 (2008).
  2. Perlmutter, J. S., Mink, J. W. Deep brain stimulation. Annual review of neuroscience. 29, 229-257 (2006).
  3. Bergstrom, M. R., Johansson, G. G., Laitinen, L. V., Sipponen, P. Electrical stimulation of the thalamic and subthalamic area in cerebral palsy. Acta physiologica Scandinavica. 67, 208-213 (1966).
  4. Benabid, A. L., et al. Chronic electrical stimulation of the ventralis intermedius nucleus of the thalamus as a treatment of movement disorders. Journal of neurosurgery. 84, 203-214 (1996).
  5. Benabid, A. L., et al. Long-term electrical inhibition of deep brain targets in movement disorders. Movement disorders : official journal of the Movement Disorder Society. 13, 119-125 (1998).
  6. Benabid, A. L., et al. Long-term suppression of tremor by chronic stimulation of the ventral intermediate thalamic nucleus. Lancet. 337, 403-406 (1991).
  7. Tierney, T. S., Lozano, A. M. Surgical treatment for secondary dystonia. Movement disorders : official journal of the Movement Disorder Society. 27, 1598-1605 (2012).
  8. Tierney, T. S., Sankar, T., Lozano, A. M. Some recent trends and further promising directions in functional neurosurgery. Acta neurochirurgica. Supplement. 117, 87-92 (2013).
  9. Tierney, T. S., Sankar, T., Lozano, A. M. Deep brain stimulation emerging indications. Progress in brain research. 194, 83-95 (2011).
  10. Sankar, T., Tierney, T. S., Hamani, C. Novel applications of deep brain stimulation. Surgical neurology international. 3, S26-S33 (2012).
  11. Tierney, T. S., Vasudeva, V. S., Weir, S., Hayes, M. T. Neuromodulation for neurodegenerative conditions. Frontiers in bioscience. 5, 490-499 (2013).
  12. Mayberg, H. S., et al. Deep brain stimulation for treatment-resistant depression. Neuron. 45, 651-660 (2005).
  13. Lyons, M. K. Deep brain stimulation: current and future clinical applications. Mayo Clinic proceedings. 86, 662-672 (2011).
  14. Lansek, R., Morris, M. E. Ch. 4. Rehabilitation in movement disorders. , 36-43 (2013).
  15. Goodwin, R., Tierney, T., Lenz, F., Anderson, W., Fried, I., Rutishauser, U., Cerf, M., Kreiman, G. Ch. 15. Single Neuron Studies of the Human Brain: Probing Cognition. 15, 275-293 (2014).
  16. Hauser, W. A. Epidemiology of epilepsy in children. Neurosurgery clinics of North America. 6, 419-429 (1995).
  17. Hauser, W. A. Recent developments in the epidemiology of epilepsy. Acta neurologica Scandinavica. Supplementum. 162, 17-21 (1995).
  18. Davis, R., Emmonds, S. E. Cerebellar stimulation for seizure control: 17-year study. Stereotactic and functional neurosurgery. 58, 200-208 (1992).
  19. Levy, L. F., Auchterlonie, W. C. Chronic cerebellar stimulation in the treatment of epilepsy. Epilepsia. 20, 235-245 (1979).
  20. Velasco, A. L., et al. Electrical stimulation of the hippocampal epileptic foci for seizure control: a double-blind, long-term follow-up study. Epilepsia. 48, 1895-1903 (2007).
  21. Tellez-Zenteno, J. F., McLachlan, R. S., Parrent, A., Kubu, C. S., Wiebe, S. Hippocampal electrical stimulation in mesial temporal lobe epilepsy. Neurology. 66, 1490-1494 (2006).
  22. Kerrigan, J. F., et al. Electrical stimulation of the anterior nucleus of the thalamus for the treatment of intractable epilepsy. Epilepsia. 45, 346-354 (2004).
  23. Hamani, C., et al. Deep brain stimulation of the anterior nucleus of the thalamus: effects of electrical stimulation on pilocarpine-induced seizures and status epilepticus. Epilepsy research. 78, 117-123 (2008).
  24. Hamani, C., et al. Bilateral anterior thalamic nucleus lesions and high-frequency stimulation are protective against pilocarpine-induced seizures and status epilepticus. Neurosurgery. 54, 191-195 (2004).
  25. Mirski, M. A., Rossell, L. A., Terry, J. B., Fisher, R. S. Anticonvulsant effect of anterior thalamic high frequency electrical stimulation in the rat. Epilepsy research. 28, 89-100 (1997).
  26. Mirski, M. A., Ferrendelli, J. A. Interruption of the mammillothalamic tract prevents seizures in guinea pigs. Science. 226, 72-74 (1984).
  27. Mirski, M. A., Ferrendelli, J. A. Anterior thalamic mediation of generalized pentylenetetrazol seizures. Brain research. 399, 212-223 (1986).
  28. Mirski, M. A., Ferrendelli, J. A. Interruption of the connections of the mammillary bodies protects against generalized pentylenetetrazol seizures in guinea pigs. The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience. 7, 662-670 (1987).
  29. Mirski, M. A., McKeon, A. C., Ferrendelli, J. A. Anterior thalamus and substantia nigra: two distinct structures mediating experimental generalized seizures. Brain research. 397, 377-380 (1986).
  30. Lee, K. J., Jang, K. S., Shon, Y. M. Chronic deep brain stimulation of subthalamic and anterior thalamic nuclei for controlling refractory partial epilepsy. Acta neurochirurgica. Supplement. 99, 87-91 (2006).
  31. Fisher, R., et al. Electrical stimulation of the anterior nucleus of thalamus for treatment of refractory epilepsy. Epilepsia. 51, 899-908 (2010).
  32. Encinas, J. M., Hamani, C., Lozano, A. M., Enikolopov, G. Neurogenic hippocampal targets of deep brain stimulation. The Journal of comparative neurology. 519, 6-20 (2011).
  33. Hattiangady, B., Rao, M. S., Shetty, A. K. Chronic temporal lobe epilepsy is associated with severely declined dentate neurogenesis in the adult hippocampus. Neurobiology of disease. 17, 473-490 (2004).
  34. Kuruba, R., Hattiangady, B., Shetty, A. K. Hippocampal neurogenesis and neural stem cells in temporal lobe epilepsy. Epilepsy & behavior : E&B. 14, 65-73 (2009).
  35. Hattiangady, B., Shetty, A. K. Implications of decreased hippocampal neurogenesis in chronic temporal lobe epilepsy. Epilepsia. 49, 26-41 (2008).
  36. Paxinos, G., Watson, C. . The Rat Brain in Stereotaxic Coordinates. , (2007).
  37. Livak, K. J., Schmittgen, T. D. Analysis of Relative Gene Expression Data Using Real-Time Quantitative PCR and the 22DDCT Method. METHODS. 25, 402-408 (2001).
  38. Kells, A. P., et al. AAV-mediated gene delivery of BDNF or GDNF is neuroprotective in a model of Huntington disease. Molecular therapy : the journal of the American Society of Gene Therapy. 9, 682-688 (2004).
  39. Han, B. H., Holtzman, D. M. BDNF protects the neonatal brain from hypoxic-ischemic injury in vivo via the ERK pathway. The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience. 20, 5775-5781 (2000).
  40. Hetman, M., Kanning, K., Cavanaugh, J. E., Xia, Z. Neuroprotection by brain-derived neurotrophic factor is mediated by extracellular signal-regulated kinase and phosphatidylinositol 3-kinase. The Journal of biological chemistry. 274, 22569-22580 (1999).
  41. Stadelmann, C., et al. BDNF and gp145trkB in multiple sclerosis brain lesions: neuroprotective interactions between immune and neuronal cells. Brain : a journal of neurology. 125, 75-85 (2002).
  42. Treiman, D. M. GABAergic mechanisms in epilepsy. Epilepsia. 42, 8-12 (2001).
  43. Benabid, A. L., Pollak, P., Louveau, A., Henry, S., de Rougemont, J. Combined (thalamotomy and stimulation) stereotactic surgery of the VIM thalamic nucleus for bilateral Parkinson disease. Applied neurophysiology. 50, 344-346 (1987).
  44. Laxton, A. W., et al. A phase I trial of deep brain stimulation of memory circuits in Alzheimer’s disease. Annals of. 68, 521-534 (2010).
  45. Tierney, T. S., Abd-El-Barr, M. M., Stanford, A. D., Foote, K. D., Okun, M. S. Deep brain stimulation and ablation for obsessive compulsive disorder: evolution of contemporary indications, targets and techniques. The International journal of neuroscience. 124, 394-402 (2014).
  46. Kennedy, S. H., et al. Deep brain stimulation for treatment-resistant depression: follow-up after 3 to 6 years. The American journal of psychiatry. 168, 502-510 (2011).
  47. Lozano, A. M., et al. Subcallosal cingulate gyrus deep brain stimulation for treatment-resistant depression. Biological psychiatry. 64, 461-467 (2008).
  48. Ackermans, L., et al. Double-blind clinical trial of thalamic stimulation in patients with Tourette syndrome. Brain : a journal of neurology. 134, 832-844 (2011).
  49. Houeto, J. L., et al. Tourette’s syndrome and deep brain stimulation. Journal of neurology, neurosurgery, and psychiatry. 76, 992-995 (2005).
  50. Maciunas, R. J., et al. Prospective randomized double-blind trial of bilateral thalamic deep brain stimulation in adults with Tourette syndrome. Journal of neurosurgery. 107, 1004-1014 (2007).
  51. Koning, P. P., Figee, M., van den Munckhof, P., Schuurman, P. R., Denys, D. Current status of deep brain stimulation for obsessive-compulsive disorder: a clinical review of different targets. Current psychiatry reports. 13, 274-282 (2011).
  52. Greenberg, B. D., et al. Deep brain stimulation of the ventral internal capsule/ventral striatum for obsessive-compulsive disorder: worldwide experience. Molecular psychiatry. 15, 64-79 (2010).
  53. Muller, U. J., et al. Successful treatment of chronic resistant alcoholism by deep brain stimulation of nucleus accumbens: first experience with three cases. Pharmacopsychiatry. 42, 288-291 (2009).
  54. Zhou, H., Xu, J., Jiang, J. Deep brain stimulation of nucleus accumbens on heroin-seeking behaviors: a case report. Biological psychiatry. 69, e41-e42 (2011).
  55. Porta, M., et al. Thalamic deep brain stimulation for treatment-refractory Tourette syndrome: two-year outcome. Neurology. 73, 1375-1380 (2009).
  56. Younce, J. R., Albaugh, D. L., Shih, Y. Y. Deep brain stimulation with simultaneous FMRI in rodents. Journal of visualized experiments : JoVE. , e51271 (2014).
  57. Park, P. J. ChIP-seq: advantages and challenges of a maturing technology. Nature reviews. Genetics. 10, 669-680 (2009).
  58. Valouev, A., et al. Genome-wide analysis of transcription factor binding sites based on ChIP-Seq data. Nature methods. 5, 829-834 (2008).
  59. Fiore, R., Siegel, G., Schratt, G. MicroRNA function in neuronal development, plasticity and disease. Biochimica et biophysica acta. 1779, 471-478 (2008).
  60. Hebert, S. S., De Strooper, B. Alterations of the microRNA network cause neurodegenerative disease. Trends in neurosciences. 32, 199-206 (2009).

Play Video

Citer Cet Article
Selvakumar, T., Alavian, K. N., Tierney, T. Analysis of Gene Expression Changes in the Rat Hippocampus After Deep Brain Stimulation of the Anterior Thalamic Nucleus. J. Vis. Exp. (97), e52457, doi:10.3791/52457 (2015).

View Video