Summary

Formuleren en karakteriseren van een op exosomen gebaseerd dopamine-dragersysteem

Published: April 04, 2022
doi:

Summary

Hier wilden we een formulering verkrijgen door dopamine te laden van de geïsoleerde exosomen van stamcellen uit Wharton’s gelei mesenchymale stamcellen. Exosoomisolatie en karakterisering, het laden van geneesmiddelen in de resulterende exosomen en de cytotoxische activiteit van de ontwikkelde formulering worden in dit protocol beschreven.

Abstract

Exosomen tussen 40 en 200 nm groot vormen de kleinste subgroep van extracellulaire blaasjes. Deze bioactieve blaasjes die door cellen worden uitgescheiden, spelen een actieve rol bij intercellulaire lading en communicatie. Exosomen worden meestal aangetroffen in lichaamsvloeistoffen zoals plasma, hersenvocht, urine, speeksel, vruchtwater, colostrum, moedermelk, gewrichtsvloeistof, sperma en pleurazuur. Gezien de grootte van exosomen, wordt gedacht dat ze een belangrijke rol kunnen spelen bij ziekten van het centrale zenuwstelsel, omdat ze de bloed-hersenbarrière (BBB) kunnen passeren. Daarom was deze studie gericht op het ontwikkelen van een op exosomen gebaseerd nanodragersysteem door dopamine in te kapselen in exosomen geïsoleerd uit Wharton’s gelei mesenchymale stamcellen (WJ-MSC’s). Exosomen die het karakteriseringsproces doorstonden, werden geïncubeerd met dopamine. De met dopamine beladen exosomen werden aan het einde van de incubatie opnieuw gekarakteriseerd. Met dopamine beladen exosomen werden onderzocht in tests voor de afgifte van geneesmiddelen en cytotoxiciteit. De resultaten toonden aan dat dopamine met succes kon worden ingekapseld in de exosomen en dat de met dopamine beladen exosomen de levensvatbaarheid van fibroblasten niet beïnvloedden.

Introduction

Exosomen, bioactieve blaasjes met belangrijke kenmerken, variëren in grootte van 40 nm tot 200 nm. Exosomen zijn afkomstig van het celmembraan en worden gevormd door het vrijkomen van de endosomen1. Deze structuren dienen als cel-tot-cel communicatoren en interageren met naburige cellen om de overdracht van actieve moleculen te vergemakkelijken. Exosomen kunnen uit veel verschillende bronnen worden geïsoleerd. Deze omvatten lichaamsvloeistoffen zoals plasma, urine, hersenvocht, speeksel, evenals cellijnen die onder in vitro omstandigheden zijn gekweekt. Exosomen spelen een belangrijke rol bij de eliminatie van zenuwbeschadiging, dankzij de biomacromoleculen die ze bevatten, zoals lipiden, eiwitten en nucleïnezuren. Glia, de ondersteunende cellen van het zenuwstelsel3, brengen eiwitten en micro-RNA’s over naar de axonen van neuronen via exosomen4.

Lipiden die de myelineschede vormen, die een kenmerkend kenmerk zijn van zenuwgeleiding, worden ook vrijgegeven uit oligodendrocyten via exosomen 4,5. Exosomen zijn ook betrokken bij processen zoals synaptische plasticiteit, neuronale stressrespons, cel-celcommunicatie en neurogenese in de hersenen 6,7. Het feit dat exosomen nano-dimensies hebben, stelt ze in staat om door de BBB te gaan. Er is een speciale overgangsroute van de interstitiële vloeistof naar de cerebrospinale vloeistof na penetratie van dit membraan8. Dankzij hun oppervlakte-eigenschappen kunnen exosomen efficiënt interageren met doelcellen als een medicijnafgiftesysteem en de geladen medicijnen actief afleveren.

Door de expressie van verschillende adhesieve eiwitten (tetraspanines en integrinen) op het oppervlak van exosomen, kunnen deze extracellulaire blaasjes gemakkelijk interageren en versmelten met gastheercelmembranen9. Er wordt gedacht dat exosomen kunnen worden gebruikt als een medicijnafgiftesysteem, vooral bij de behandeling van ziekten van het centrale zenuwstelsel vanwege hun vermogen om de BBB binnen te dringen en hun oppervlakte-eigenschappen. Van mesenchymale stamcellen (MSC) afgeleide exosomen hebben een lager risico op immuunafstoting in vergelijking met allogene cellulaire therapieën, en in dit opzicht kunnen ze een belangrijk onderdeel zijn van celvrije behandelingstoepassingen10.

Dopamine is een molecuul waarvan het tekort in de hersenen het kenmerkende kenmerk is van de ziekte van Parkinson (PD), dat met de dag verergert11,12,13. Het is bekend dat PD geassocieerd is met degeneratie van dopaminerge neuronen in de substantia nigra van het mesencephalon en verlies van motorneuronfuncties14,15. De dood van dopaminerge neuronen verhindert de toevoer van de neurotransmitter dopamine naar het hersenstriatum. Dit resulteert op zijn beurt in het ontstaan van PD-specifieke symptomen16. Deze symptomen van PD zijn bradykinesie, houdingsinstabiliteit, stijfheid en vooral rusttremor12,13. Hoewel PD meer dan twee eeuwen geleden voor het eerst werd beschreven, zijn er nog steeds studies gaande om de pathologie en etiologie van de ziekte te begrijpen en wordt momenteel aangenomen dat PD een complexe systemische ziekte is17. Er wordt voorspeld dat dopamine-deficiëntie optreedt en klinische PD-symptomen worden waargenomen wanneer meer dan 80% van de neuronen degenereert18. Bij de behandeling van de ziekte wordt de voorkeur gegeven aan onvolledige dopaminesuppletie om motorische symptomen te verminderen. In vivo studies hebben aangetoond dat directe infusie van dopamine in de hersenen de symptomen bij dieren aanzienlijk vermindert19. Dopamine-precursoren zoals L-DOPA (L-3,4-dihydroxyfenylalanine) en dopaminereceptorgeneesmiddelen worden in de kliniek gebruikt omdat de directe infusie van dopamine in de hersenen bij mensen niet mogelijk is en dopamine die het systeem binnenkomt de BBB20 niet kan passeren. Dit soort medicijnen verliezen na verloop van tijd hun effectiviteit. Er is echter nog steeds geen curatieve behandelingsaanpak voor PD. Daarom is er een enorme noodzaak om nieuwe therapeutische strategieën en behandelingsmodaliteiten te ontwikkelen om de pathofysiologie van de ziekte te onthullen en de impact van PD op patiënten te verminderen.

Op exosomen gebaseerde studies hebben onlangs de aandacht getrokken voor het verzamelen van informatie over zowel therapeutische benaderingen als pathologieën van ziekten van het zenuwstelsel. Van MSC-afgeleide exosomen is aangetoond dat ze ontstekingen bij zenuwbeschadiging verminderen en bijdragen aan neuronale regeneratie21,22,23. Bovendien is gemeld dat MSC-afgeleide exosoomsecretomen apoptose verminderen door neurotrofe en neuroprotectieve effecten te vertonen, vooral op dopaminerge neuronen24,25. Onderzoek naar platforms waarin exosomen worden gebruikt als therapeutische medicijnafgiftesystemen is de afgelopen jaren intensief versneld. In talrijke onderzoeken is waargenomen dat relevante geneesmiddelen gemakkelijk kunnen worden ingekapseld in exosomen en veilig kunnen worden afgeleverd in doelcellen, weefsels en organen26,27. Verschillende methoden, zoals incubatie, vries-/dooicycli, sonicatie en extrusie, kunnen worden gebruikt voor het laden van geneesmiddelen in exosomen28.

Coincubatie met exosomen of exosoomachtige blaasjes maakt het mogelijk om lipofiele kleine moleculen passief in te kapselen in deze afgiftesystemen28,29,30. In het bijzonder werden verschillende moleculen zoals curcumine 31, catalase 30, doxorubicine32 en paclitaxel33 effectief in exosomen geladen. Er is waargenomen dat catalase-bevattende exosomen, die een antioxiderende werking hebben, zich efficiënt ophoopten in de neuronen en microgliacellen in de hersenen en sterke neuroprotectieve activiteiten vertoonden30. In dezelfde studie bleek saponine, dat aan het complex werd toegevoegd om de laadefficiëntie te verhogen, het laadpercentage van het geneesmiddel tijdens de incubatie te verhogen30,34. Er zijn echter verdere studies nodig om de normen vast te stellen voor het laden van geneesmiddelen in exosomen.

Dit artikel beschrijft de ontwikkeling van een nanodragersysteem door dopamine in te kapselen in exosomen die werden geïsoleerd uit WJ-MSC’s. Alle stappen, waaronder het kweken van WJ-MSC’s, isolatie en karakterisering van exosomen, experimenten met het laden van geneesmiddelen, karakterisering van dopamine-geladen exosomen met verschillende technieken en in vitro cytotoxiciteitsanalyse worden de detail uitgelegd.

Protocol

OPMERKING: Zie de materiaaltabel voor details met betrekking tot alle materialen en apparatuur die in dit protocol worden gebruikt. 1. Kweken en cryopreservatie van mesenchymale stamcellen van Wharton’s jelly Haal de WJ-MSC’s (van ATCC) uit de vriezer van -80 °C. Zaai de cellen in een kolf met DMEM-F12-medium, aangevuld met 10% foetaal runderserum (FBS). Incubeer ze bij 37 °C in een incubator met 5% CO2 . Verander het kweekmedi…

Representative Results

Exosoomisolatie en karakteriseringWharton jelly-stamcellen worden gekweekt en geïncubeerd in een serumvrij medium gedurende 48 uur wanneer de cultuur voldoende dichtheid bereikt. Na het einde van de incubatie wordt het supernatans opgeslagen bij -20 °C. De verzamelde supernatanten worden verdund met PBS en onderworpen aan ultracentrifugatie (figuur 1). De verkregen oplossing wordt geanalyseerd door middel van NTA- en DLS-analyses. De exosomen worden gesteriliseerd doo…

Discussion

Exosomen zijn kleine membraanblaasjes met afmetingen van 40-200 nm die worden uitgescheiden door de meeste celtypen, bijvoorbeeld MSC’s1. Exosomen zijn in staat om communicatie tussen cellen mogelijk te maken en kunnen cellen op verschillende manieren binnendringen, zoals endocytose, fagocytose, micropinocytose, lipide-gemedieerde internalisatie en fusie33,44. In vergelijking met andere nanodragersystemen verlenen de lipiden en cholesterol…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Het werk werd voornamelijk ondersteund door onderzoeksfinanciering van de wetenschappelijke onderzoeksprojecten van de Technische Universiteit Yıldız (TSA-2021-4713).

Materials

0.22 µm membrane filter Aisimo Used for the sterilization process
0.45 µm syringe filter Aisimo Used for the sterilization process
15 mL Falcon tube Nest Used in cell culture step
25 cm2 cell culture flasks (Falcon, TPP tissue culture flasks Nest Used in cell culture step
50 mL Falcon tube Nest Used in cell culture step
75 cm2 cell culture flasks (Falcon, TPP tissue culture flasks Nest Used in cell culture step
96 well plates (Falcon, TPP microplates) Merck Millipore Used in cell culture step
Acetonitrile Sigma 271004-1L Used for HPLC analysis
Autoclave NUVE-OT 90L Used for the sterilization process
Cell Culture Cabin Hera Safe KS Used for the cell culture process
Centrifugal Hitachi CF16RN Used in the exosome isolation step
CO2 incubator with Safe Cell UV Panasonic Used for the cell culture process
Dopamine hydrochloride H8502-10G Sigma H8502-10G Used in exosome dopamine loading
Dulbecco's Modified Eagle's Medium/Nutrient Mixture-F12 Sigma RNBJ7249 Used as cell culture medium
Fetal Bovine Serum-FBS Capricorn FBS-16A It was used by adding to the cell culture medium.
Freezer -80 °C Panasonic MDF-U5386S-PE To store cells and the resulting exosomes
Fridge Panasonic MPR-215-PE Used to store cell culture and other materials
High performance liquid chromatography-HPLC Agilent Technologies The presence of dopamine from the content of the obtained formulation was investigated.
Microscope- Primovert Zeiss Used to observe cells in cell culture.
MTT Assay Biomatik Used to measure cell viability
NanoSight NS300 Malvern panalytical Malvern panalytical Used for exosome characterization
Optima XPN-100 Ultracentrifuge Beckman Coulter Used in the exosome isolation step
PBS tablet Biomatik 43602 In the preparation of the PBS solution
Penicilin/Streptomycin Solution Capricorn PB-S It was added to the medium to prevent contamination in cell culture.
Pipette Aid Isolab
Precision balance-Kern Kern-ABJ220-4NM Used in the preparation of solutions
Q500 Sonicator Qsonica, LLC Used to digest exosomes in HPLC analysis
Saponin Sigma 47036-50G-F It was used by adding it to the total solution in the exosome dopamine loading process.
Spectrostar-Nano-Spectrophotometry BMG LABTECH Used for MTT and drug release analyzes
SPSS 22 statistical package program
Vorteks-FinePCR FinePCR-FineVortex Used to mix solutions homogeneously
Water Bath 37 °C-Senova Senova Used in cell culture step
Wharton’s jelly mesenchymal stem cells ATCC
ZetaSizer Malvern Nano ZS Malvern Nano ZS Used for exosome characterization

Referências

  1. Ingato, D., Lee, J. U., Sim, S. L., Kwon, Y. L. Good things come in small packages: Overcoming challenges to harness extracellular vesicles for therapeutic delivery. Journal of Controlled Release. 241, 174-185 (2016).
  2. Riazifar, M., et al. Stem cell-derived exosomes as nanotherapeutics for autoimmune and neurodegenerative disorders. ACS Nano. 13 (6), 6670-6688 (2019).
  3. Ursavaş, S., Darıci, H., Karaoz, E. Olfactory ensheathing cells: Unique glial cells promising for treatments of spinal cord injury. Journal of Neuroscience Research. 99 (6), 1579-1597 (2021).
  4. Skog, J., et al. Glioblastoma microvesicles transport RNA and proteins that promote tumour growth and provide diagnostic biomarkers. Nature Cell Biology. 10 (12), 1470-1476 (2008).
  5. Fruhbeis, C., Frohlich, D., Kramer-Albers, E. M. Emerging roles of exosomes in neuron-glia communication. Frontiers in Physiology. 3 (119), 1-7 (2012).
  6. Qing, L., Chen, H., Tang, J., Jia, X. Exosomes and their microRNA cargo: new players in peripheral nerve regeneration. Neurorehabil Neural Repair. 32 (9), 765-776 (2018).
  7. Saeedi, S., Israel, S., Nag, C., Turecki, G. The emerging role of exosomes in mental disorders. Translational Psychiatry. 9 (1), 122 (2019).
  8. Jan, A. T., et al. Perspective insights of exosomes in neurodegenerative diseases: A critical appraisal. Frontiers in Aging Neuroscience. 9, 317 (2017).
  9. Montecalvo, A., et al. Mechanism of transfer of functional microRNAs between mouse dendritic cells via exosomes. Blood. 119 (3), 756-766 (2012).
  10. Yu, B., Zhang, X., Li, X. Exosomes derived from mesenchymal stem cells. International Journal of Molecular Sciences. 15 (3), 4142-4157 (2014).
  11. Pahuja, R., et al. Trans-blood brain barrier delivery of dopamine-loaded nanoparticles reverses functional deficits in Parkinsonian rats. ACS Nano. 9 (5), 4850-4871 (2015).
  12. Rao, S. S., Hofmann, L. A., Shakil, A. Parkinson’s disease: Diagnosis and treatment. American Family Physician. 15 (74), 2046-2054 (2006).
  13. Teves, J. M. Y., et al. Parkinson’s disease skin fibroblasts display signature alterations in growth, redox homeostasis, mitochondrial function, and autophagy. Frontiers Neuroscience. 11, 737 (2017).
  14. Kalia, L. V., Lang, A. E. Parkinson disease in 2015: Evolving basic, pathological and clinical concepts in PD. Nature Reviews Neurology. 12 (2), 65-66 (2016).
  15. Poewe, W., et al. Parkinson disease. Nature Reviews Disease Primers. 3, 17013 (2017).
  16. Carlsson, T., Björklund, T. Restoration of the striatal dopamine synthesis for Parkinson’s disease: Viral vector-mediated enzyme replacement strategy. Current Gene Therapy. 7 (2), 109-120 (2007).
  17. Simon, D. K., Tanner, C. M., Brundin, P. Parkinson disease epidemiology, pathology, genetics, and pathophysiology. Clinics in Geriatric Medicine. 36 (1), 1-12 (2020).
  18. Salat, D., Tolosa, E. Levodopa in the treatment of Parkinson’s disease: Current status and new developments. Journal of Parkinson’s Disease. 3 (3), 255-269 (2013).
  19. Senthilkumar, K. S., et al. Unilateral implantation of dopamine-loaded biodegradable hydrogel in the striatum attenuates motor abnormalities in the 6-Hydroxydopamine model of Hemi-Parkinsonism. Behavioral Brain Research. 184 (1), 11-18 (2007).
  20. Krishna, R., Ali, M., Moustafa, A. A. Effects of combined MAO-B inhibitors and levodopa vs. monotherapy in Parkinson’s disease. Frontiers Aging Neuroscience. 6, 180 (2014).
  21. Armstrong, M. J., Okun, M. S. Diagnosis and treatment of Parkinson disease: A review. JAMA. 323 (6), 548-560 (2020).
  22. Rivero Vaccari, J. P. Exosome-mediated inflammasome signaling after central nervous system injury. Journal of Neurochemistry. 136, 39-48 (2016).
  23. Han, D., Wu, C., Xiong, Q., Zhou, L., Tian, Y. Anti-inflammatory mechanism of bone marrow mesenchymal stem cell transplantation in rat model of spinal cord injury. Cell Biochemistry and Biophysics. 71 (3), 1341-1347 (2015).
  24. Vilaça-Faria, H., Salgado, A. J., Teixeira, F. G. Mesenchymal stem cells-derived exosomes: A new possible therapeutic strategy for Parkinson’s disease?. Cells. 8 (2), 118-135 (2019).
  25. Mendes-Pinheiro, B., et al. marrow mesenchymal stem cells secretome exerts neuroprotective effects in a Parkinson’s disease rat model. Frontiers in Bioengineering and Biotechnology. 7, 294 (2019).
  26. Kalani, A., Kamat, P. K., Chaturvedi, P., Tyagi, S. C., Tyagi, N. Curcumin-primed exosomes mitigate endothelial cell dysfunction during hyperhomocysteinemia. Life Sciences. 107 (1-2), 1-7 (2014).
  27. Kalani, A., Tyagi, A., Tyagi, N. Exosomes: Mediators of neurodegeneration, neuroprotection, and therapeutics. Molecular Neurobiology. 49 (1), 590-600 (2014).
  28. Jamur, M. C., Oliver, C. Permeabilization of cell membranes. Methods in Molecular Biology. 588, 63-66 (2010).
  29. Rani, S., Ryan, A. E., Griffin, M. D., Ritter, T. Mesenchymal stem cell-derived extracellular vesicles: Toward cell-free therapeutic applications. Molecular Therapy. 23 (5), 812-823 (2015).
  30. Haney, M. J., et al. Exosomes as drug delivery vehicles for Parkinson’s disease therapy. Journal of Controlled Release. 207, 18-30 (2015).
  31. Sun, D., et al. A novel nanoparticle drug delivery system: The anti-inflammatory activity of curcumin is enhanced when encapsulated in exosomes. Molecular Therapy. 18 (9), 1606-1614 (2010).
  32. Tian, Y., et al. A doxorubicin delivery platform using engineered natural membrane vesicle exosomes for targeted tumor therapy. Biomaterials. 35 (7), 2383-2390 (2014).
  33. Yang, T., et al. Exosome delivered anticancer drugs across the blood-brain barrier for brain cancer therapy in danio rerio. Pharmaceutical Research. 32 (6), 2003-2014 (2015).
  34. Chen, H. X., et al. Exosomes derived from mesenchymal stem cells repair a Parkinson’s disease model by inducing autophagy. Cell Death Disease. 11 (4), 288 (2020).
  35. Yu, F., et al. Olfactory ensheathing cells seeded decellularized scaffold promotes axonal regeneration in spinal cord injury rats. Journal of Biomedical Materials Research. 109 (5), 779-787 (2020).
  36. Coughlan, C., et al. Exosome isolation by ultracentrifugation and precipitation and techniques for downstream analyses. Current Protocols in Cell Biology. 88 (1), 110 (2020).
  37. Qu, M., et al. Dopamine-loaded blood exosomes targeted to brain for better treatment of Parkinson’s disease. Journal of Controlled Release. 287, 156-166 (2018).
  38. Kim, M. S., et al. Development of exosome-encapsulated paclitaxel to overcome MDR In cancer cells. Nanomedicine: Nanotechnology, Biology, and Medicine. 12 (3), 655-664 (2016).
  39. Branquinho, R. T., et al. HPLC-DAD and UV-spectrophotometry for the determination of lychnopholide in nanocapsule dosage form: Validation and application to release kinetic study. Journal of Chromatographic Science. 52 (1), 19-26 (2014).
  40. Karagöz Kutlutürk, I., et al. Producing aflibercept loaded poly (lactic-co-glycolic acid) [PLGA] nanoparticles as a new ocular drug delivery system and its challenges. Fresenius Environmental Bulletin. 30 (2), 1481-1493 (2021).
  41. Setiawatie, E. M., et al. Viability of nigella sativa toothpaste with SLS compared non-SLS on fibroblast cell culture. Journal of International Dental and Medical Research. 14 (2), 525-528 (2021).
  42. Jebelli, A., Khalaj-Kondori, M., Rahmati-Yamchi, M. The effect of beta-boswellic acid on the expression of Camk4 and Camk2α genes in the PC12 cell line. Advanced Pharmaceutical Bulletin. 10 (3), 437-443 (2020).
  43. Cantelmo, R. A., Santos, N. A., Santos, A. C., Regiane, S., Joca, L. Dual effects of S-Adenosyl-Methionine on Pc12 cells exposed to the dopaminergic neurotoxin MPP. Journal of Pharmacy and Pharmacology. 72 (10), 1427-1435 (2020).
  44. Mulcahy, L. A., Pink, R. C., Carter, D. R. Routes and mechanisms of extracellular vesicle uptake. Journal of Extracell Vesicles. 3, (2014).
  45. Kooijmans, S. A., Vader, P., van Dommelen, S. M., van Solinge, W. W., Schiffelers, R. M. Exosome mimetics: A novel class of drug delivery systems. International Journal of Nanomedicine. 7 (1), 1525-1541 (2012).
  46. Yuan, Z., Kolluri, K. K., Gowers, K. H., Janes, S. M. Trail delivery by MSC-derived extracellular vesicles is an effective anticancer therapy. Journal Extracell Vesicles. 6 (1), 1265291 (2017).
  47. Darici, H., Sun, E., Koyuncu-Irmak, D., Karaöz, E., Khan, M. Mesenchymal stem cells for the treatment of COVID-19: Why and when they should be used? in Human Mesenchymal Stem Cells. Journal of Stem Cells. 4 (15), 159-181 (2021).
  48. Koyuncu-Irmak, D., Darici, H., Karaoz, E. Stem cell-based therapy option in COVID-19: Is it promising?. Aging and Disease. 11 (5), 1174-1191 (2020).
  49. Leblanc, P., et al. Isolation of exosomes and microvesicles from cell culture systems to study prion transmission. Exosomes Microvesicles. 1545, 153-176 (2017).
  50. Fuhrmann, G., Serio, A., Mazo, M., Nair, R., Stevens, M. M. Active loading into extracellular vesicles significantly improves the cellular uptake and photodynamic effect Of porphyrins. Journal of Control Release. 205, 35-44 (2015).
  51. Mehryab, F., et al. Exosomes as a next-generation drug delivery system: An update on drug loading approaches, characterization, and clinical application challenges. Acta Biomaterialia. 113, 42-62 (2020).
  52. Zhang, Y., et al. Exosome: A review of its classification, isolation techniques, storage, diagnostic and targeted therapy applications. International Journal of Nanomedicine. 15, 6917-6934 (2020).
check_url/pt/63624?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Yavuz, B., Darici, H., Zorba Yildiz, A. P., Abamor, E. Ş., Topuzoğullari, M., Bağirova, M., Allahverdiyev, A., Karaoz, E. Formulating and Characterizing an Exosome-based Dopamine Carrier System. J. Vis. Exp. (182), e63624, doi:10.3791/63624 (2022).

View Video