Summary

גיבוש ואפיון מערכת נשאי דופמין מבוססת אקסוזום

Published: April 04, 2022
doi:

Summary

כאן, שאפנו להשיג ניסוח על ידי העמסת דופמין של האקסוזומים המבודדים של תאי גזע מתאי גזע מזנכימליים ג’לי של וורטון. בידוד ואפיון אקסוזום, העמסת תרופות לתוך האקסוזומים המתקבלים, והפעילות ציטוטוקסית של הפורמולציה המפותחת מתוארים בפרוטוקול זה.

Abstract

אקסוזומים בגודל של 40 עד 200 ננומטר מהווים את תת-הקבוצה הקטנה ביותר של שלפוחיות חוץ-תאיות. שלפוחיות ביו-אקטיביות אלה המופרשות על ידי תאים ממלאות תפקיד פעיל במטען ובתקשורת בין-תאיים. אקסוזומים נמצאים בעיקר בנוזלי גוף כגון פלזמה, נוזל מוחי שדרתי, שתן, רוק, מי שפיר, קולוסטרום, חלב אם, נוזל מפרקים, זרע וחומצה פלאורלית. בהתחשב בגודל של אקסוזומים, הוא חשב כי הם עשויים לשחק תפקיד חשוב במחלות מערכת העצבים המרכזית כי הם יכולים לעבור דרך מחסום הדם-מוח (BBB). לפיכך, מחקר זה נועד לפתח מערכת ננו-נשאית מבוססת אקסוזום על ידי עטיפת דופמין לתוך אקסוזומים שבודדו מתאי גזע מזנכימליים ג’לי של וורטון (WJ-MSCs). אקסוזומים שעברו את תהליך האפיון הודגרו עם דופמין. האקסוזומים טעוני הדופמין אופיינו מחדש בסוף הדגירה. אקסוזומים עמוסי דופמין נחקרו במבחני שחרור תרופות וציטוטוקסיות. התוצאות הראו כי ניתן לעטוף בהצלחה דופמין בתוך האקסוזומים וכי האקסוזומים העמוסים בדופמין לא השפיעו על יכולת הקיום של פיברובלסטים.

Introduction

אקסוזומים, בועיות ביו-אקטיביות בעלות תכונות משמעותיות, נעים בין 40 ננומטר ל-200 ננומטר. אקסוזומים מקורם בקרום התא והם נוצרים בגלל שחרור האנדוזומים1. מבנים אלה משמשים כמתקשרים בין תאים ומתקשרים עם תאים שכנים כדי להקל על העברת מולקולות פעילות. אקסוזומים יכולים להיות מבודדים ממקורות רבים ושונים. אלה כוללים נוזלי גוף כגון פלזמה, שתן, נוזל מוחי שדרתי, רוק, כמו גם קווי תאים בתרבית בתנאי מבחנה . לאקסוזומים יש תפקיד חשוב בסילוק נזק עצבי, הודות לביו-מקרומולקולות שהם מכילים, כגון שומנים, חלבונים וחומצות גרעין2. גליה, שהם התאים התומכים של מערכת העצבים3, מעבירים חלבונים ומיקרו-רנ”א לאקסונים של נוירונים באמצעות אקסוזומים4.

שומנים המרכיבים את מעטפת המיאלין, שהם תכונה אופיינית בהולכה עצבית, משתחררים גם מאוליגודנדרוציטים באמצעות אקסוזומים 4,5. אקסוזומים מעורבים גם בתהליכים כגון פלסטיות סינפטית, תגובת לחץ עצבי, תקשורת תא-תא ויצירת תאי עצב במוח 6,7. העובדה שלאקסוזומים יש ננו-ממד מאפשרת להם לעבור דרך ה-BBB. יש מסלול מעבר מיוחד מהנוזל הבין-תאי לנוזל השדרה לאחר חדירה לקרום זה8. הודות לתכונות פני השטח שלהם, אקסוזומים יכולים לתקשר ביעילות עם תאי המטרה כמערכת אספקת תרופות ולהעביר באופן פעיל את התרופות הטעונות.

בשל הביטוי של חלבוני דבק שונים (טטרספנינים ואינטגרינים) על פני השטח של אקסוזומים, שלפוחיות חוץ-תאיות אלה יכולות בקלות לתקשר ולהתמזג עם קרום התא המארח9. הוא חשב כי אקסוזומים יכולים לשמש כמערכת העברת תרופות, במיוחד בטיפול במחלות מערכת העצבים המרכזית בשל יכולתם לחדור BBB ואת תכונות פני השטח שלהם. אקסוזומים שמקורם בתאי גזע מזנכימליים (MSC) הם בעלי סיכון נמוך יותר לדחייה חיסונית בהשוואה לטיפולים תאיים אלוגניים, ומבחינה זו, הם יכולים להיות מרכיב חשוב ביישומי טיפול ללא תאים10.

דופמין הוא מולקולה שמחסור במוח הוא המאפיין האופייני של מחלת פרקינסון (PD), המחמיר מיום ליום11,12,13. ידוע כי מחלת פרקינסון קשורה לניוון של נוירונים דופמינרגיים בחומר השחור של המזנצפלון ולאובדן תפקודי נוירונים מוטוריים14,15. המוות של נוירונים דופמינרגיים מונע את אספקת המוליך העצבי דופמין לסטריאטום המוח. זה, בתורו, מביא את הופעתם של סימפטומים ספציפיים PD16. תסמינים אלה של פרקינסון הם ברדיקינזיה, חוסר יציבות יציבה, נוקשות, ובמיוחד רעד במנוחה12,13. למרות שמחלת פרקינסון תוארה לראשונה לפני יותר ממאתיים שנה, מחקרים להבנת הפתולוגיה והאטיולוגיה של המחלה עדיין נמשכים וכיום מקובל כי פרקינסון היא מחלה מערכתית מורכבת17. זה צפוי כי מחסור בדופמין מתרחש, ותסמינים קליניים PD נצפים כאשר יותר מ 80% של נוירונים מתנוונים18. בטיפול במחלה, תוספת דופמין חלקית עדיפה כדי להפחית את הסימפטומים המוטוריים. מחקרי In vivo הראו כי עירוי ישיר של דופמין למוח מפחית באופן משמעותי את הסימפטומים אצל בעלי חיים19. מבשרי דופמין כגון L-DOPA (L-3,4-dihydroxyphenylalanine) ותרופות קולטן דופמין משמשים במרפאה מכיוון שעירוי ישיר של דופמין למוח אינו אפשרי בבני אדם ודופמין הנכנס למערכת אינו יכול לחצות את BBB20. תרופות מסוג זה מאבדות את יעילותן עם הזמן. עם זאת, עדיין אין גישה טיפולית מרפאת לפרקינסון. לפיכך, יש צורך עצום לפתח אסטרטגיות טיפוליות ושיטות טיפול חדשות כדי לחשוף את הפתופיזיולוגיה של המחלה ולהפחית את ההשפעה של פרקינסון על החולים.

מחקרים מבוססי אקסוזום משכו לאחרונה תשומת לב לאיסוף מידע הן על גישות טיפוליות והן על פתולוגיות של מחלות מערכת העצבים. אקסוזומים שמקורם ב-MSC הוכחו כמפחיתים דלקת בנזק עצבי ותורמים להתחדשות עצבית21,22,23. בנוסף, דווח כי הפרשות אקסוזום שמקורן ב- MSC מפחיתות אפופטוזיס על ידי הצגת השפעות נוירוטרופיות ונוירופרוטקטיביות, במיוחד על נוירונים דופמינרגיים24,25. המחקר על פלטפורמות שבהן אקסוזומים משמשים כמערכות מתן תרופות טיפוליות הואץ באופן אינטנסיבי בשנים האחרונות. במחקרים רבים, נצפה כי תרופות רלוונטיות יכולות להיעטף בקלות לאקסוזומים ולהעביר בבטחה לתאי מטרה, רקמות ואיברים26,27. שיטות שונות כגון דגירה, מחזורי הקפאה/הפשרה, סוניקציה ושחול יכולות לשמש להעמסת תרופות לתוך אקסוזומים28.

דגירה עם אקסוזומים או שלפוחיות דמויות אקסוזום מאפשרת למולקולות קטנות ליפופיליות להיות עטופות באופן פסיבי במערכות העברה אלה28,29,30. בפרט, מולקולות שונות כגון כורכומין 31, קטלאז 30, דוקסורוביצין32 ופקליטקסל33 הועמסו ביעילות לתוך אקסוזומים. נצפה כי אקסוזומים המכילים קטלאז, בעלי פעילות נוגדת חמצון, צברו ביעילות בנוירונים ובתאי מיקרוגליאה במוח והפגינו פעילות נוירופרוטקטורית חזקה30. באותו מחקר, סאפונין, שנוסף למתחם כדי להגביר את יעילות ההעמסה, נמצא כמגדיל את אחוז העמסת התרופה במהלך הדגירה30,34. עם זאת, נדרשים מחקרים נוספים כדי לקבוע את הסטנדרטים להעמסת תרופות לתוך אקסוזומים.

מאמר זה מתאר את התפתחותה של מערכת ננו-נשאית על ידי אנקפסולציה של דופמין לתוך אקסוזומים שבודדו מ-WJ-MSCs. כל השלבים, כולל טיפוח WJ-MSCs, בידוד ואפיון אקסוזומים, ניסויי העמסת תרופות, אפיון אקסוזומים טעוני דופמין בטכניקות שונות, וניתוח ציטוטוקסיות חוץ גופית מוסברים בפירוט.

Protocol

הערה: עיין בטבלת החומרים לקבלת פרטים הקשורים לכל החומרים והציוד המשמשים בפרוטוקול זה. 1. טיפוח ושימור בהקפאה של תאי גזע מזנכימליים ג’לי של וורטון הוציאו את WJ-MSCs (מ-ATCC) מהמקפיא בטמפרטורה של -80°C. זרעו את התאים לתוך בקבוק המכיל DMEM-F12 בינוני בתוספת 10% סרום בק…

Representative Results

בידוד ואפיון אקסוזוםתאי גזע של ג’לי וורטון מתורבתים ומודגרים בתווך ללא סרום במשך 48 שעות כאשר התרבית מגיעה לצפיפות מספקת. לאחר סיום הדגירה, supernatant מאוחסן ב -20 מעלות צלזיוס. הסופרנאטנטים שנאספו מדוללים באמצעות PBS ונתונים לאולטרה-צנטריפוגה (איור 1). הפתרון המתקבל מנ…

Discussion

אקסוזומים הם בועיות קרום קטנות עם ממדים של 40-200 ננומטר המופרשים על ידי רוב סוגי התאים, למשל, MSCs1. אקסוזומים מסוגלים לאפשר תקשורת בין תאים, ויכולים להיכנס לתאים בדרכים שונות כגון אנדוציטוזה, פאגוציטוזה, מיקרופינוציטוזה, הפנמה בתיווך שומנים ואיחוי33,44

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

העבודה נתמכה בעיקר על ידי מימון מחקר שסופק על ידי Yıldız Technical University Scientific Research Projects (TSA-2021-4713).

Materials

0.22 µm membrane filter Aisimo Used for the sterilization process
0.45 µm syringe filter Aisimo Used for the sterilization process
15 mL Falcon tube Nest Used in cell culture step
25 cm2 cell culture flasks (Falcon, TPP tissue culture flasks Nest Used in cell culture step
50 mL Falcon tube Nest Used in cell culture step
75 cm2 cell culture flasks (Falcon, TPP tissue culture flasks Nest Used in cell culture step
96 well plates (Falcon, TPP microplates) Merck Millipore Used in cell culture step
Acetonitrile Sigma 271004-1L Used for HPLC analysis
Autoclave NUVE-OT 90L Used for the sterilization process
Cell Culture Cabin Hera Safe KS Used for the cell culture process
Centrifugal Hitachi CF16RN Used in the exosome isolation step
CO2 incubator with Safe Cell UV Panasonic Used for the cell culture process
Dopamine hydrochloride H8502-10G Sigma H8502-10G Used in exosome dopamine loading
Dulbecco's Modified Eagle's Medium/Nutrient Mixture-F12 Sigma RNBJ7249 Used as cell culture medium
Fetal Bovine Serum-FBS Capricorn FBS-16A It was used by adding to the cell culture medium.
Freezer -80 °C Panasonic MDF-U5386S-PE To store cells and the resulting exosomes
Fridge Panasonic MPR-215-PE Used to store cell culture and other materials
High performance liquid chromatography-HPLC Agilent Technologies The presence of dopamine from the content of the obtained formulation was investigated.
Microscope- Primovert Zeiss Used to observe cells in cell culture.
MTT Assay Biomatik Used to measure cell viability
NanoSight NS300 Malvern panalytical Malvern panalytical Used for exosome characterization
Optima XPN-100 Ultracentrifuge Beckman Coulter Used in the exosome isolation step
PBS tablet Biomatik 43602 In the preparation of the PBS solution
Penicilin/Streptomycin Solution Capricorn PB-S It was added to the medium to prevent contamination in cell culture.
Pipette Aid Isolab
Precision balance-Kern Kern-ABJ220-4NM Used in the preparation of solutions
Q500 Sonicator Qsonica, LLC Used to digest exosomes in HPLC analysis
Saponin Sigma 47036-50G-F It was used by adding it to the total solution in the exosome dopamine loading process.
Spectrostar-Nano-Spectrophotometry BMG LABTECH Used for MTT and drug release analyzes
SPSS 22 statistical package program
Vorteks-FinePCR FinePCR-FineVortex Used to mix solutions homogeneously
Water Bath 37 °C-Senova Senova Used in cell culture step
Wharton’s jelly mesenchymal stem cells ATCC
ZetaSizer Malvern Nano ZS Malvern Nano ZS Used for exosome characterization

Referências

  1. Ingato, D., Lee, J. U., Sim, S. L., Kwon, Y. L. Good things come in small packages: Overcoming challenges to harness extracellular vesicles for therapeutic delivery. Journal of Controlled Release. 241, 174-185 (2016).
  2. Riazifar, M., et al. Stem cell-derived exosomes as nanotherapeutics for autoimmune and neurodegenerative disorders. ACS Nano. 13 (6), 6670-6688 (2019).
  3. Ursavaş, S., Darıci, H., Karaoz, E. Olfactory ensheathing cells: Unique glial cells promising for treatments of spinal cord injury. Journal of Neuroscience Research. 99 (6), 1579-1597 (2021).
  4. Skog, J., et al. Glioblastoma microvesicles transport RNA and proteins that promote tumour growth and provide diagnostic biomarkers. Nature Cell Biology. 10 (12), 1470-1476 (2008).
  5. Fruhbeis, C., Frohlich, D., Kramer-Albers, E. M. Emerging roles of exosomes in neuron-glia communication. Frontiers in Physiology. 3 (119), 1-7 (2012).
  6. Qing, L., Chen, H., Tang, J., Jia, X. Exosomes and their microRNA cargo: new players in peripheral nerve regeneration. Neurorehabil Neural Repair. 32 (9), 765-776 (2018).
  7. Saeedi, S., Israel, S., Nag, C., Turecki, G. The emerging role of exosomes in mental disorders. Translational Psychiatry. 9 (1), 122 (2019).
  8. Jan, A. T., et al. Perspective insights of exosomes in neurodegenerative diseases: A critical appraisal. Frontiers in Aging Neuroscience. 9, 317 (2017).
  9. Montecalvo, A., et al. Mechanism of transfer of functional microRNAs between mouse dendritic cells via exosomes. Blood. 119 (3), 756-766 (2012).
  10. Yu, B., Zhang, X., Li, X. Exosomes derived from mesenchymal stem cells. International Journal of Molecular Sciences. 15 (3), 4142-4157 (2014).
  11. Pahuja, R., et al. Trans-blood brain barrier delivery of dopamine-loaded nanoparticles reverses functional deficits in Parkinsonian rats. ACS Nano. 9 (5), 4850-4871 (2015).
  12. Rao, S. S., Hofmann, L. A., Shakil, A. Parkinson’s disease: Diagnosis and treatment. American Family Physician. 15 (74), 2046-2054 (2006).
  13. Teves, J. M. Y., et al. Parkinson’s disease skin fibroblasts display signature alterations in growth, redox homeostasis, mitochondrial function, and autophagy. Frontiers Neuroscience. 11, 737 (2017).
  14. Kalia, L. V., Lang, A. E. Parkinson disease in 2015: Evolving basic, pathological and clinical concepts in PD. Nature Reviews Neurology. 12 (2), 65-66 (2016).
  15. Poewe, W., et al. Parkinson disease. Nature Reviews Disease Primers. 3, 17013 (2017).
  16. Carlsson, T., Björklund, T. Restoration of the striatal dopamine synthesis for Parkinson’s disease: Viral vector-mediated enzyme replacement strategy. Current Gene Therapy. 7 (2), 109-120 (2007).
  17. Simon, D. K., Tanner, C. M., Brundin, P. Parkinson disease epidemiology, pathology, genetics, and pathophysiology. Clinics in Geriatric Medicine. 36 (1), 1-12 (2020).
  18. Salat, D., Tolosa, E. Levodopa in the treatment of Parkinson’s disease: Current status and new developments. Journal of Parkinson’s Disease. 3 (3), 255-269 (2013).
  19. Senthilkumar, K. S., et al. Unilateral implantation of dopamine-loaded biodegradable hydrogel in the striatum attenuates motor abnormalities in the 6-Hydroxydopamine model of Hemi-Parkinsonism. Behavioral Brain Research. 184 (1), 11-18 (2007).
  20. Krishna, R., Ali, M., Moustafa, A. A. Effects of combined MAO-B inhibitors and levodopa vs. monotherapy in Parkinson’s disease. Frontiers Aging Neuroscience. 6, 180 (2014).
  21. Armstrong, M. J., Okun, M. S. Diagnosis and treatment of Parkinson disease: A review. JAMA. 323 (6), 548-560 (2020).
  22. Rivero Vaccari, J. P. Exosome-mediated inflammasome signaling after central nervous system injury. Journal of Neurochemistry. 136, 39-48 (2016).
  23. Han, D., Wu, C., Xiong, Q., Zhou, L., Tian, Y. Anti-inflammatory mechanism of bone marrow mesenchymal stem cell transplantation in rat model of spinal cord injury. Cell Biochemistry and Biophysics. 71 (3), 1341-1347 (2015).
  24. Vilaça-Faria, H., Salgado, A. J., Teixeira, F. G. Mesenchymal stem cells-derived exosomes: A new possible therapeutic strategy for Parkinson’s disease?. Cells. 8 (2), 118-135 (2019).
  25. Mendes-Pinheiro, B., et al. marrow mesenchymal stem cells secretome exerts neuroprotective effects in a Parkinson’s disease rat model. Frontiers in Bioengineering and Biotechnology. 7, 294 (2019).
  26. Kalani, A., Kamat, P. K., Chaturvedi, P., Tyagi, S. C., Tyagi, N. Curcumin-primed exosomes mitigate endothelial cell dysfunction during hyperhomocysteinemia. Life Sciences. 107 (1-2), 1-7 (2014).
  27. Kalani, A., Tyagi, A., Tyagi, N. Exosomes: Mediators of neurodegeneration, neuroprotection, and therapeutics. Molecular Neurobiology. 49 (1), 590-600 (2014).
  28. Jamur, M. C., Oliver, C. Permeabilization of cell membranes. Methods in Molecular Biology. 588, 63-66 (2010).
  29. Rani, S., Ryan, A. E., Griffin, M. D., Ritter, T. Mesenchymal stem cell-derived extracellular vesicles: Toward cell-free therapeutic applications. Molecular Therapy. 23 (5), 812-823 (2015).
  30. Haney, M. J., et al. Exosomes as drug delivery vehicles for Parkinson’s disease therapy. Journal of Controlled Release. 207, 18-30 (2015).
  31. Sun, D., et al. A novel nanoparticle drug delivery system: The anti-inflammatory activity of curcumin is enhanced when encapsulated in exosomes. Molecular Therapy. 18 (9), 1606-1614 (2010).
  32. Tian, Y., et al. A doxorubicin delivery platform using engineered natural membrane vesicle exosomes for targeted tumor therapy. Biomaterials. 35 (7), 2383-2390 (2014).
  33. Yang, T., et al. Exosome delivered anticancer drugs across the blood-brain barrier for brain cancer therapy in danio rerio. Pharmaceutical Research. 32 (6), 2003-2014 (2015).
  34. Chen, H. X., et al. Exosomes derived from mesenchymal stem cells repair a Parkinson’s disease model by inducing autophagy. Cell Death Disease. 11 (4), 288 (2020).
  35. Yu, F., et al. Olfactory ensheathing cells seeded decellularized scaffold promotes axonal regeneration in spinal cord injury rats. Journal of Biomedical Materials Research. 109 (5), 779-787 (2020).
  36. Coughlan, C., et al. Exosome isolation by ultracentrifugation and precipitation and techniques for downstream analyses. Current Protocols in Cell Biology. 88 (1), 110 (2020).
  37. Qu, M., et al. Dopamine-loaded blood exosomes targeted to brain for better treatment of Parkinson’s disease. Journal of Controlled Release. 287, 156-166 (2018).
  38. Kim, M. S., et al. Development of exosome-encapsulated paclitaxel to overcome MDR In cancer cells. Nanomedicine: Nanotechnology, Biology, and Medicine. 12 (3), 655-664 (2016).
  39. Branquinho, R. T., et al. HPLC-DAD and UV-spectrophotometry for the determination of lychnopholide in nanocapsule dosage form: Validation and application to release kinetic study. Journal of Chromatographic Science. 52 (1), 19-26 (2014).
  40. Karagöz Kutlutürk, I., et al. Producing aflibercept loaded poly (lactic-co-glycolic acid) [PLGA] nanoparticles as a new ocular drug delivery system and its challenges. Fresenius Environmental Bulletin. 30 (2), 1481-1493 (2021).
  41. Setiawatie, E. M., et al. Viability of nigella sativa toothpaste with SLS compared non-SLS on fibroblast cell culture. Journal of International Dental and Medical Research. 14 (2), 525-528 (2021).
  42. Jebelli, A., Khalaj-Kondori, M., Rahmati-Yamchi, M. The effect of beta-boswellic acid on the expression of Camk4 and Camk2α genes in the PC12 cell line. Advanced Pharmaceutical Bulletin. 10 (3), 437-443 (2020).
  43. Cantelmo, R. A., Santos, N. A., Santos, A. C., Regiane, S., Joca, L. Dual effects of S-Adenosyl-Methionine on Pc12 cells exposed to the dopaminergic neurotoxin MPP. Journal of Pharmacy and Pharmacology. 72 (10), 1427-1435 (2020).
  44. Mulcahy, L. A., Pink, R. C., Carter, D. R. Routes and mechanisms of extracellular vesicle uptake. Journal of Extracell Vesicles. 3, (2014).
  45. Kooijmans, S. A., Vader, P., van Dommelen, S. M., van Solinge, W. W., Schiffelers, R. M. Exosome mimetics: A novel class of drug delivery systems. International Journal of Nanomedicine. 7 (1), 1525-1541 (2012).
  46. Yuan, Z., Kolluri, K. K., Gowers, K. H., Janes, S. M. Trail delivery by MSC-derived extracellular vesicles is an effective anticancer therapy. Journal Extracell Vesicles. 6 (1), 1265291 (2017).
  47. Darici, H., Sun, E., Koyuncu-Irmak, D., Karaöz, E., Khan, M. Mesenchymal stem cells for the treatment of COVID-19: Why and when they should be used? in Human Mesenchymal Stem Cells. Journal of Stem Cells. 4 (15), 159-181 (2021).
  48. Koyuncu-Irmak, D., Darici, H., Karaoz, E. Stem cell-based therapy option in COVID-19: Is it promising?. Aging and Disease. 11 (5), 1174-1191 (2020).
  49. Leblanc, P., et al. Isolation of exosomes and microvesicles from cell culture systems to study prion transmission. Exosomes Microvesicles. 1545, 153-176 (2017).
  50. Fuhrmann, G., Serio, A., Mazo, M., Nair, R., Stevens, M. M. Active loading into extracellular vesicles significantly improves the cellular uptake and photodynamic effect Of porphyrins. Journal of Control Release. 205, 35-44 (2015).
  51. Mehryab, F., et al. Exosomes as a next-generation drug delivery system: An update on drug loading approaches, characterization, and clinical application challenges. Acta Biomaterialia. 113, 42-62 (2020).
  52. Zhang, Y., et al. Exosome: A review of its classification, isolation techniques, storage, diagnostic and targeted therapy applications. International Journal of Nanomedicine. 15, 6917-6934 (2020).
check_url/pt/63624?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Yavuz, B., Darici, H., Zorba Yildiz, A. P., Abamor, E. Ş., Topuzoğullari, M., Bağirova, M., Allahverdiyev, A., Karaoz, E. Formulating and Characterizing an Exosome-based Dopamine Carrier System. J. Vis. Exp. (182), e63624, doi:10.3791/63624 (2022).

View Video