Summary

Sirkulerende tumorcellelinjer: et innovativt verktøy for grunnleggende og translasjonell forskning

Published: December 25, 2021
doi:

Summary

Culturing CTCs tillater en dypere funksjonell karakterisering av kreft, gjennom å analyse spesifikke markør uttrykk, og vurdere narkotikaresistens og evnen til å kolonisere leveren blant andre muligheter. Samlet sett kan CTC-kultur være et lovende klinisk verktøy for personlig medisin for å forbedre pasientutfallet.

Abstract

Metastase er en ledende årsak til kreftdød. Til tross for forbedringer i behandlingsstrategier har metastatisk kreft en dårlig prognose. Vi står dermed overfor et presserende behov for å forstå mekanismene bak metastaseringsutvikling, og dermed foreslå effektive behandlinger for avansert kreft. Metastatiske kreftformer er vanskelige å behandle, da biopsier er invasive og utilgjengelige. Nylig har det vært stor interesse for flytende biopsier, inkludert både cellefrie sirkulerende deoksyribonukleinsyre (DNA) og sirkulerende tumorceller fra perifert blod, og vi har etablert flere sirkulerende tumorcellelinjer fra metastatiske kolorektal kreftpasienter for å delta i karakteriseringen. Faktisk, for å funksjonelt karakterisere disse sjeldne og dårlig beskrevne cellene, er det avgjørende trinnet å utvide dem. Når de er etablert, kan sirkulerende tumorcellelinjer (CTC) deretter dyrkes under suspensjon eller tilhengerforhold. På molekylært nivå kan CTC-linjer videre brukes til å vurdere uttrykket av spesifikke markører av interesse (for eksempel differensiering, epitelceller eller kreftstamceller) ved immunfluorescens eller cytometrianalyse. I tillegg kan CTC-linjer brukes til å vurdere legemiddelfølsomhet overfor gullstandard kjemoterapi samt målrettede terapier. Ctc-linjers evne til å initiere svulster kan også testes ved subkutan injeksjon av CTCer i immunodeficient mus.

Til slutt er det mulig å teste rollen til spesifikke gener av interesse som kan være involvert i kreftformidling ved å redigere CTC-gener, ved kort hårnål ribonukleinsyre (shRNA) eller Crispr / Cas9. Modifiserte CTCer kan dermed injiseres i immunodeficient mus milt, for å eksperimentelt etterligne en del av den metastatiske utviklingsprosessen in vivo.

Til slutt er CTC-linjer et dyrebart verktøy for fremtidig forskning og for personlig medisin, hvor de vil tillate prediksjon av behandlingseffektivitet ved hjelp av selve cellene som opprinnelig er ansvarlige for metastase.

Introduction

Til tross for nylige forbedringer i tidlig kreftdiagnose og i terapeutisk strategi, skyldes mer enn nitti prosent av kreftmorbiditeten fortsatt metastase1. Den metastatiske prosessen er en flertrinns kaskade som starter med lokal løsrivelse av celler fra primærsvulsten og deres inngang til blodet der de blir sirkulerende tumorceller (CTCer) for endelig å kolonisere fjerne steder som lever og lunger, i tilfelle kolorektal kreft (CRC)2. Nylig har det vært økende oppmerksomhet på flytende biopsier, som er et ikke-invasivt verktøy for å oppdage og liste opp CTCer fra pasientblodprøver. Intratumor genetisk heterogenitet er en viktig årsak til narkotikaresistens; Dermed utgjør isolerende representative celler fra tumormateriale et lovende verktøy for personlig medisin3.

Til tross for lav frekvens av CTCer i blodet (1 CTC per 106 – 107 leukocytter)4, ble flere deteksjons- og isolasjonsteknikker utviklet basert på egenskapsforskjeller mellom CTCer og andre komponenter i blodet5. Antall CTCer i pasientblodprøver, alene, kan gi informasjon om stadium av malignitet, behandlingsrespons og sykdomsprogresjon6,7. Derfor er CTC-isolasjon et avgjørende verktøy for translasjonsstudier for å vurdere genetisk heterogenitet eller utføre narkotikascreening, samt for grunnleggende studier for å karakterisere disse invasive cellene, da de er de viktigste aktørene for metastatisk induksjon8,9. Faktisk, sammenlignet med kommersielt etablerte kreftcellelinjer som har akkumulert tusenvis av mutasjoner over tid, deler friske CTCer hovedtrekkene til den opprinnelige primærsvulsten, inkludert en potent kapasitet til å metastasere, og de er en bedre refleksjon av sykdommen. Disse funksjonene gjør dem til et robust verktøy for grunnleggende studier, spesielt i knockout-eksperimenter av anslåtte nøkkelfaktorer involvert i metastase. Utfallet av disse eksperimentene kan valideres in vivo, på mus, som beskrevet nedenfor.

Når CTCer er isolert, kan de utvides i ikke-tilhengerkulturelle forhold, og da kan de manipuleres akkurat som alle tilgjengelige kreftcellelinjer, det vil si at de like kan dyrkes i følgeforhold eller innebygd i Matrigel, avhengig av det vitenskapelige spørsmålet10. For eksempel, for å teste uttrykket og lokaliseringen av et protein av interesse, kan CTC-sfærer dyrkes i suspensjonstilstand og bygges inn i Histogel for å utføre immunfluorescens på sfæreseksjoner. I tillegg, hvis proteinet er membranøst, kan uttrykket på levende celler måles ved cytometri.

For funksjonelle studier, for å teste rollen som et protein av interesse som kan spille en rolle i leverkolonisering, kan CTCer med gener redigert, av shRNA eller CRISPR / Cas9, injiseres i milten av immunodeficient mus. Dette sistnevnte eksperimentet er en kraftig modell for å etterligne levermetastase kolonisering11.

CTCs evne til å initiere svulster kan vurderes ved å injisere et svært lite antall celler i immundefektende mus. Ettersom tumorinitiering er et kjennetegn på kreftstamceller (CSCer), vil denne analysen indikere prosentandelen CSC-er innenfor CTC-linjer. Denne stamcellefenotypen gjør sirkulerende tumorcellelinjer motstandsdyktige mot noen gullstandard kreftbehandlinger. Utvidede CTCer kan derfor brukes til å screene narkotika og finne den beste potensielle effektive behandlingen for pasienten; CTC respons på behandling kan testes in vitro ved hjelp av en luminescens levedyktighet analyse, for eksempel.

I et langsiktig perspektiv kan legemiddelscreening på nyisolerte og forsterkede CTCer brukes som et nytt verktøy for persontilpasset medisin for å hjelpe til med å velge den mest effektive og tilpassede behandlingen for pasienter.

I det nåværende papiret er protokoller for kultur CTC-linjer, for å flekke spesifikke proteiner via immunstaining og cytometri, for å utføre cytotoksisitetsanalyser samt in vivo xenograft-eksperimenter med CTC detaljert.

Protocol

Alle in vivo-protokoller ble godkjent av dyreetiske etater. 1. CTC-forsterkning i 3D-kulturforhold For å dyrke CTCer i suspensjon, første frø CTCer i brønner av en Ultra-Low Attachment (ULA) 24-brønns plate ved maksimal konsentrasjon på 5 celler / μL og i 1 ml M12 medium (dvs. avansert DMEM-F12 supplert med 2 mM l-glutamin, 100 Unit/ml penicillin og streptomycin, N2 supplement, 20 ng/ml epidermal vekstfaktor og 10 ng/ml fibroblast vekstfaktor…

Representative Results

Både EpCAM- og CD26-uttrykk som observeres av IF (figur 1A høyre panel) og FACS ( figur1B), angir at CTC-linjen er epitelial og viser et av CSC-kjennetegnene10. Dette epiteliske trekket kan ytterligere karakteriseres ved farging med antistoffer rettet mot andre epitel- og mesenchymale markører. Dermed kan det være mulig å omtrent vite hvor CTC-linjen er langs epitel-mesenchymal aksen. Uttrykk for andre CSC-markører …

Discussion

Protokollen beskrevet ovenfor ble opprinnelig brukt til kolorektal CTC funksjonell karakterisering, men den kan brukes til andre typer kreft som brystkreft og kan tilpasses for musemodeller.

Den reelle begrensende faktoren er antall CTCer som er tilstede i blodprøven og effektiviteten til teknikken som brukes til å isolere og utvide dem. Flere CTC-isolasjonsteknologier er beskrevet basert på spesifikke CTC-egenskaper som Parsortix, en mikrofluidisk enhet, som tillater isolering av CTCer bas…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette forskningsprosjektet i Pannequin-laboratoriet ble støttet av forskningsstipend fra SIRIC: Grant « INCa-DGOS-Inserm 6045». Doktorgradsavhandlinger av Guillaume Belthier og Zeinab Homayed ble støttet av anti-kreft ligaen / Ligue contre le Cancer. Céline Bouclier lønn ble finansiert av “region Occitanie”. Takk til Julian Venables for engelsk redigering.

Materials

Accumax solution Sigma-Aldrich A7089
Advanced DMEM/F-12 Gibco 12634028
CellTiter-Glo Luminescent Cell Viability Assay Promega G7570
Corning Matrigel Growth Factor Reduced (GFR) Basement Membrane Matrix Corning 354230
Costar 24-well Clear Flat Bottom Ultra-Low Attachment Multiple Well Plates, Corning 3473
Histiogel Specimen Medium LabStorage HG-4000
Human EGF, premium grade Miltenyi Biotec 130-097-751
Human FGF-2, premium grade Miltenyi Biotec 130-093-564
L-Glutamine (200 mM) Gibco 25030081
N-2 Supplement Gibco 17502048
Penicillin-Streptomycin (5,000 U/mL) Gibco 15070063

Riferimenti

  1. Wittekind, C., Neid, M. Cancer invasion and metastasis. Oncology. 69, 14-16 (2005).
  2. Eger, A., Mikulits, W. Models of epithelial-mesenchymal transition. Drug Discovery Today: Disease Models. 2, 57-63 (2005).
  3. Palmirotta, R., et al. Liquid biopsy of cancer: a multimodal diagnostic tool in clinical oncology. Therapeutic Advances in Medical Oncology. 10, (2018).
  4. Hong, B., Zu, Y. Detecting circulating tumor cells: current challenges and new trends. Theranostics. 3, 377-394 (2013).
  5. vander Toom, E. E., Verdone, J. E., Gorin, M. A., Pienta, K. J. Technical challenges in the isolation and analysis of circulating tumor cells. Oncotarget. 7, 62754-62766 (2016).
  6. Jin, L., et al. Evaluation of the diagnostic value of circulating tumor cells with CytoSorter® CTC capture system in patients with breast cancer. Cancer Medicine. 9, 1638-1647 (2020).
  7. Huang, X., et al. Relationship between circulating tumor cells and tumor response in colorectal cancer patients treated with chemotherapy: a meta-analysis. BMC Cancer. 14, 976 (2014).
  8. Yu, M., et al. Ex vivo culture of circulating breast tumor cells for individualized testing of drug susceptibility. Science. 345, 216-220 (2014).
  9. Aceto, N., et al. Circulating Tumor Cell Clusters are Oligoclonal Precursors of Breast Cancer Metastasis. Cell. 158, 1110-1122 (2014).
  10. Grillet, F., et al. Circulating tumour cells from patients with colorectal cancer have cancer stem cell hallmarks in ex vivo culture. Gut. 66, 1802-1810 (2017).
  11. Lee, W. Y., Hong, H. K., Ham, S. K., Kim, C. I., Cho, Y. B. Comparison of Colorectal Cancer in Differentially Established Liver Metastasis Models. Anticancer Research. 34, 3321-3328 (2014).
  12. Giraud, J., et al. Progastrin production transitions from Bmi1+/Prox1+ to Lgr5high cells during early intestinal tumorigenesis. Translational Oncology. 14, (2020).
  13. Xu, L., et al. Optimization and Evaluation of a Novel Size Based Circulating Tumor Cell Isolation System. PLoS One. 10, 0138032 (2015).
  14. Beije, N., Jager, A., Sleijfer, S. Circulating tumor cell enumeration by the CellSearch system: the clinician’s guide to breast cancer treatment. Cancer Treatment Reviews. 41, 144-150 (2015).
  15. Karabacak, N. M., et al. Microfluidic, marker-free isolation of circulating tumor cells from blood samples. Nature Protocols. 9, 694-710 (2014).
  16. Ozkumur, E., et al. Inertial Focusing for Tumor Antigen-Dependent and -Independent Sorting of Rare Circulating Tumor Cells. Science Translational Medicine. 5, (2013).
check_url/it/62329?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Belthier, G., Homayed, Z., Bouclier, C., Asari, M., Pannequin, J. Circulating Tumor Cell Lines: an Innovative Tool for Fundamental and Translational Research. J. Vis. Exp. (178), e62329, doi:10.3791/62329 (2021).

View Video