Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
JoVE Journal Neuroscience
Click here for the English version

Neuroscience

מדידת תחלופת שומנים בממברנה עם ND6 אנלוגי פלואורסצנטי רגיש ל- pH

Published: July 29, 2021 doi: 10.3791/62717
Automatic Translation
1,2, 1,2, 3, 3, 3, 1,2
1The Brain Institute at Florida Atlantic University, 2Department of Biomedical Sciences, Florida Atlantic University, 3Department of Chemistry and Biochemistry, Florida Atlantic University

Summary

פרוטוקול זה מציג שיטת הדמיה פלואורסצנטית המשתמשת במחלקה של פלואורופורים ליפידים רגישים ל- pH כדי לעקוב אחר תנועת קרום השומנים במהלך אקסוציטוזה של התא ומחזור האנדוציטוזה.

Abstract

אקסו/אנדוציטוזה הוא תהליך נפוץ המתווך חילופי ביומולקולות בין תאים לסביבתם ובין תאים שונים. תאים מתמחים משתמשים בתהליך זה כדי לבצע תפקודי גוף חיוניים כגון הפרשת אינסולין מתאי β ושחרור מוליכים עצביים מסינפסות כימיות. בשל חשיבותו הפיזיולוגית, אקסו/אנדוציטוזה היה אחד הנושאים הנחקרים ביותר בביולוגיה של התא. כלים רבים פותחו כדי לחקור את התהליך הזה ברמת הגן והחלבון, שבגללם ידוע רבות על מנגנון החלבונים המשתתפים בתהליך זה. עם זאת, מעט מאוד שיטות פותחו כדי למדוד את תחלופת השומנים בממברנה, שהיא הבסיס הפיזי של אקסו / אנדוציטוזה.

מאמר זה מציג סוג של אנלוגים חדשים של שומנים פלואורסצנטיים המציגים פלואורסצנטיות תלוית pH ומדגים את השימוש בהם כדי לעקוב אחר מחזור שומנים בין קרום הפלזמה לבין שלפוחיות ההפרשה. בעזרת מניפולציות pH פשוטות, אנלוגים אלה מאפשרים גם לכמת את התפלגות השומנים על פני השטח ואת תאי הממברנה התאיים, כמו גם את מדידת קצב תחלופת השומנים במהלך exo-/ אנדוציטוזה. כתבי שומנים חדשים אלה יהיו בעלי עניין רב בתחומי מחקר ביולוגיים שונים כגון ביולוגיה של התא ומדעי המוח.

Introduction

דו-שכבת השומנים היא אחת ממכלולי הביומולקולות הנפוצות ביותר והיא הכרחית לכל התאים. מחוץ לתאים, הוא יוצר את תאי התממשקות קרום הפלזמה ואת סביבתם; בתוך התאים, הוא ממדר אברונים שונים המתמחים בפונקציות ייעודיות. באופן דינמי יותר מאשר דומם, קרומי השומנים חווים כל הזמן איחוי וביקוע, המתווכים את שינוע החומרים הביולוגיים, רפורמת אברונים, שינוי מורפולוגיה ותקשורת תאית. אין ספק, קרום השומנים הוא הבסיס הפיזי כמעט לכל התהליכים התאיים, ותפקוד לקוי שלו משחק תפקיד מכריע בהפרעות שונות, החל מסרטן1 ועד מחלת אלצהיימר2. למרות שמולקולות שומנים הן הרבה פחות מגוונות מחלבונים, מחקר הממברנות עד כה היה בעיקר ממוקד חלבון. לדוגמה, הרבה יותר ידוע על מכונות חלבון מאשר על שומנים באקסוציטוזה 3,4,5. יתר על כן, הארגון, הפיזור, הדינמיקה וההומאוסטזיס של ליפידים על פני השטח ועל פני השטח של הממברנות התוך-תאיות נותרו במידה רבה בלתי נחקרים בהשוואה לחלבוני ממברנה6.

זה לא מפתיע מכיוון שטכניקות מודרניות של ביולוגיה מולקולרית, כגון מוטגנזה, מספקות יתרון מתודולוגי לחקר חלבונים ולא ליפידים. לדוגמה, תיוג מהונדס של חלבון פלואורסצנטי ירוק רגיש ל- pH רגיש ל- pHluorin לחלבוני שלפוחית מאפשר מדידה כמותית של כמות וקצב תחלופת חלבון שלפוחית במהלך exo-/אנדוציטוזה 7,8,9. עם זאת, זה כמעט בלתי אפשרי לשנות גנטית שומנים בקרום in vivo. יתר על כן, מניפולציות איכותיות ואפילו כמותיות של כמויות חלבון והתפלגויות הם הרבה יותר ריאלי מאלה של שומנים10. עם זאת, שומנים פלואורסצנטיים מקומיים וסינתטיים בודדו ופותחו כדי לדמות שומנים אנדוגניים בממברנה במבחנה ו-in vivo11. קבוצה אחת של שומנים פלואורסצנטיים בשימוש נרחב הם צבעי סטיריל, למשל FM1-43, המציגים פלואורסצנטיות משופרת בקרום ומהווים כלי רב עוצמה בחקר שחרור שלפוחית סינפטית (SV) בתאי עצב12. לאחרונה, צבעי שומנים רגישים לסביבה הומצאו ונעשה בהם שימוש נרחב כסוג חדש של כתבים לחקר תכונות שונות של קרום התא, כולל פוטנציאל קרום11, סדר שלב13 והפרשת14.

סוג חדש של מימטי שומנים שהפלואורסצנטיות שלהם רגישה גם ל-pH (למשל, pHluorin) וגם לקרום (למשל, FM1-43) פותחה כדי למדוד ישירות את התפלגות השומנים בקרום הפלזמה ובאנדוזומים/ליזוזומים ואת תנועת השומנים במהלך אקסו/אנדוציטוזה. הפלואורופורים הסולבטוכרומיים הידועים בעלי תכונות דחיפה-משיכה עקב העברת מטען תוך-מולקולרית נבחרו למטרה זו. מבין הפלואורופורים הסולבטוכרומיים הקיימים, פיגום 1,8-נפתלימיד (ND) קל יחסית לשינוי, רב-תכליתי לתיוג, והוא ייחודי בפוטו-פיזיקה15 ולכן שימש באינטרקלטורים של דנ"א, דיודות פולטות אור אורגניות וחיישני ביומולקולות 16,17,18.

הצמדת קבוצה תורמת אלקטרונים למיקום C4 של פיגום ND יוצרת מבנה דחיפה-משיכה, המוביל למומנט דיפול מוגבר על ידי חלוקה מחדש של צפיפות האלקטרונים במצב מעורר19,20. העברת מטען תוך-מולקולרית כזו מייצרת תפוקות קוונטיות גדולות ותזוזות סטוקס, והתוצאה היא פלואורסצנטיות בהירה ויציבה21. קבוצה זו פיתחה לאחרונה סדרה של אנלוגים שומנים solvatochromic המבוססים על פיגום ND והשיגה אותם עם תשואות סינתטיות טובות20.

אפיון ספקטרוסקופי מראה שבין המוצרים האלה, ND6 הוא בעל התכונות הפלואורסצנטיות הטובות ביותר (איור 1)20. ראשית, יש לו שיאי עירור ופליטה מופרדים היטב (כלומר, ~400 ננומטר ו~520 ננומטר, בהתאמה, באיור 2A,B) בהשוואה לפלואורופורים פופולריים כמו פלואורסצאין איזותיוציאנט, רודמין או GFP, מה שהופך אותו לניתן להפרדה ספקטרלית מהם ולכן שימושי להדמיה מרובת צבעים. שנית, פלואורסצנטיות ND6 מציגה עלייה של יותר מפי שמונה בפלואורסצנטיות שלה בנוכחות מיצלות (איור 2C), מה שמרמז על תלות חזקה בקרום. מחקרי הדמיה פלואורסצנטיים קודמים של תאים חיים עם סוגים שונים של תאים הראו צביעת קרום מעולה על ידי ND620. שלישית, כאשר רמת החומציות של התמיסה יורדת מ-7.5 (נמצא בדרך כלל בסביבות חוץ-תאיות או ציטוסוליות) ל-5.5 (נמצא בדרך כלל באנדוזומים וליזוזומים), ND6 מראה עלייה של בערך פי 2 בפלואורסצנטיות (איור 2D), מה שמראה את רגישות ה-pH שלה. יתר על כן, סימולציה של דינמיקה מולקולרית מצביעה על כך ש-ND6 משתלב בקלות בדו-שכבה השומנית כאשר פיגום ה-ND שלו פונה החוצה מהממברנה ושאריות פיפרזין ומראה אינטראקציות חזקות עם קבוצות ראשי פוספוליפידים (איור 3). בסך הכל, תכונות אלה הופכות את ND6 לאנלוגי שומנים פלואורסצנטי אידיאלי כדי להמחיש ולמדוד את תחלופת השומנים בקרום במהלך אקסו/אנדוציטוזה.

מאמר זה מציג שיטה לחקר קצב התחלופה והדינמיקה של שומנים SV באמצעות תאי עצב בהיפוקמפוס של עכבר בתרבית. על-ידי גירוי תאי עצב עם תמיסות K+ Tyrode גבוהות, SVs וקרום הפלזמה הועמסו ב-ND6 (איור 4A,B). לאחר מכן, תאי עצב עוררו מחדש עם גירויים שונים, ואחריהם תמיסות של NH4Cl ו-pH 5.5 Tyrode (איור 4D). פרוטוקול זה מאפשר מדידה כמותית של שיעורי האקסוציטוזה והאנדוציטוזה המורכבים בנסיבות שונות (איור 4C).

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

הפרוטוקול הבא כולל (1) הליך פשוט לביסוס תרביות בהיפוקמפוס ובקליפת המוח של עכברים המבוסס על פרוטוקול מבוסס היטב22, (2) מבוא קצר למערך מיקרוסקופ אפיפלואורסצנטי עבור נוירונים חיים, (3) תיאור מפורט של טעינה והדמיה של ND6 בנוירונים של עכברים, (4) דיון על כימות הסחר בממברנות על ידי אות ND6. כל הנהלים עוקבים אחר הנחיות הבטיחות הביולוגית ו- IACUC באוניברסיטת פלורידה אטלנטיק. הסינתזה של ND6 תוארה בעבר20.

1. הכנת תרביות עכבר, היפוקמפוס וקליפת המוח;

הערה: אם לא צוין אחרת, יש לבצע את כל השלבים במכסה מנוע זרימה למינרית ברמת בטיחות ביולוגית 2. לעקר את כל הכלים והחומרים.

  1. השתמש במלקחיים במידה 5 כדי להניח כיסויי זכוכית בצלחות תרבית מרובות.
    הערה: לדוגמה, צלחת 24 בארות אידיאלית עבור כיסויים של 12 מ"מ Equation 1 .
  2. הוסף את הנפח המתאים של מטריצות חוץ-תאיות כדי לצפות את פני השטח של תרבית התא (לדוגמה, 75 מיקרוליטר של תמיסת מטריצת קרום מרתף לכל כיסוי של 12 מ"מ Equation 1 ; ראה טבלת חומרים)
  3. הניחו את הצלחות המוכנות באינקובטור תרביות הרקמה (5% CO2, 100% לחות ו-37°C) למשך 1-4 שעות כדי לאפשר הצלבה של מטריצת קרום המרתף.
  4. הקריבו את בעלי החיים, פתחו את הגולגולת והעבירו את המוח כולו לצלחת פטרי בקוטר 35 מ"מ עם 3 מ"ל של תמיסת מלח מאוזנת של האנק (HBSS) המכילה 20% נסיוב בקר עוברי (H+20). חתכו את המוח לאורך קו האמצע, והפרידו את קליפת המוח ואת ההיפוקמפי במכסה מנוע של דיסקציה של זרימה למינרית כדי להפחית את הזיהום.
  5. השתמש במספריים כדי לחתוך את הרקמות לחתיכות קטנות (~ 1 מ"מ3). העבר רקמות אלה לצינור חרוטי של 15 מ"ל המכיל 5 מ"ל של H+20.
  6. לשטוף את הרקמות שלוש פעמים עם 5 מ"ל של H + 20 ושלוש פעמים עם 5 מ"ל של HBSS.
  7. הוסף 1.5 מ"ל של 1% טריפסין עם חומצה טטראצטית אתילאנדיאמין ודגור ב 37 ° C במשך 10 דקות לעיכול אנזים.
  8. חזור על שלב 1.6 והשתמש בוואקום כדי לשאוף HBSS בסופו של דבר.
  9. נתק את הרקמות באופן מכני ב- 1 מ"ל HBSS המכיל 2.95 גרם / ליטר MgSO4•7H2O באמצעות פיפטת זכוכית מלוטשת אש.
  10. צנטריפוגה את תרחיף התא ב 400 × גרם, 4 ° C במשך 5 דקות.
  11. שאפו את הסופרנאטנט והשעו מחדש את התאים בנפח מתאים של מצע תרבית כדי לקבל ריכוז של ~10,000,000 תאים / מ"ל.
  12. צלחת את התאים ב ~ 1,000,000 תאים / ס"מ2 ומניחים את התרבית באינקובטור (5% CO2, 100% לחות, ו 37 ° C) במשך 1-4 שעות כדי להקל על חיבור התא לכיסויי זכוכית.
  13. הוסף נפח מתאים של מדיום תרבית (למשל, 1 מ"ל לבאר עבור צלחת של 24 בארות). הוסף את אותו נפח של מדיום תרבות לאחר שבוע אחד. לאחר שבועיים, החליפו מחצית ממדיום התרבות הקיים במדיה רעננה מדי שבוע.

2. מערך מיקרוסקופ להדמיית פלואורסצנטיות של תאים חיים

הערה: מערך הדמיה לדוגמה (איור 5) כולל לפחות מיקרוסקופ פלואורסצנטי הפוך (ראה טבלת חומרים), מקור אור פלואורסצנטי עם תריס אוטומטי, ערכות מסנן פלואורסצנטיות (לדוגמה, עבור הדמיה ND6, השתמש ב- 405/10 BP לעירור, 495 LP עבור דיכרואית ו- 510/20 BP עבור פליטה), ומצלמה בעלת רגישות גבוהה (Table of Materials), שכולם נשלטים על ידי תוכנה לרכישת תמונה (Table of Materials).

  1. הכן תא הדמיה המאפשר בקרת טמפרטורה וקלט/פלט תמיסה להדמיית פלואורסצנטיות של תאים חיים.
    הערה: לדוגמה, בפרוטוקול זה נעשה שימוש בתא הדמיה מותאם לאמבטיה פתוחה המקובע על פלטפורמת חימום (איור 6).
  2. הגדר התקן ניתן לתכנות כדי להחליף את פתרונות הזילוח ולספק את הגירוי החשמלי בנקודות זמן מוגדרות במהלך ההדמיה.
    הערה: סנכרון חומרה ותוכנה נחוץ לניתוחים כמותיים (איור 7). לדוגמה, בפרוטוקול זה, פלט טריגר ממצלמת ההדמיה שימש להפעלת תוכנית מחשב השולטת במכשיר מתג אוטומטי, השולט במערכת זילוח רב ערוצית ובמגרה דופק מרובע.
  3. כדי לצלם במשותף שני כתבים פלואורסצנטיים או יותר, בצע הדמיה פלואורסצנטית רב-ערוצית על-ידי החלפת מערכות מסננים ברצף או על-ידי פיצול בו-זמני של פליטות פלואורסצנטיות שונות והקרנה לאותה מצלמה.

3. טעינה והדמיה ND6 בתרביות עצביות

  1. לשקול כמות מתאימה של ND6, להמיס אותו dimethylsulfoxide (DMSO), ולאפשר לו להמיס בטמפרטורת החדר; סוניק לזמן קצר (למשל, 3 דקות). סנן את תמיסת המלאי הגולמי באמצעות מסנן של 0.22 מיקרומטר כדי להסיר אגרגטים גדולים של צבע. לאחר הסינון, קבע את ריכוז הצבע על ידי ספקטרוסקופיית בליעה ב 405 ננומטר באמצעות ספקטרופוטומטר קונבנציונלי או מיקרו-נפח באמצעות ε = 10,700 M-1 cm-1.
  2. לפני היישום, לדלל את תמיסת המלאי לריכוז של 1 מיקרומטר באמצעות תמיסת האמבטיה. שמור את תמיסת המלאי בטמפרטורת החדר בחושך.
  3. תיוג אנדוזומים ושלפוחיות סינפטיות
    1. כדי לתייג בכל מקום תאי ממברנה אנדוציטוזיים כגון אנדוזומים, יש להוסיף תמיסת מלאי ND6 (למשל, 1 מילימטר ב-DMSO) למדיום התרבית בריכוז הסופי של 1 מיקרומטר, ולדגור ב-5%CO2, 100% לחות ו-37°C למשך 30 דקות. כדי להפחית את היקף התיוג SV, לדכא את הפעילות העצבית הספונטנית מבחינה פרמקולוגית. לדוגמה, השתמש בטטרודוטוקסין כדי לחסום פוטנציאלי פעולה או 2,3-dioxo-6-nitro-1,2,3,4-tetrahydrobenzo[f]quinoxaline-7-sulfonamide (NBQX) ו-D-(-)-2-amino-5-phosphonopentanoic acid (D-AP5) כדי לעכב שידור מעורר23.
    2. כדי לתייג באופן סלקטיבי SVs, השתמש בגירוי קצר אך חזק כדי לעורר exo-/endocytosis presynaptic. ראשית, העבירו את כיסויי התרבית לצלחת פטרי בקוטר 35 מ"מ Equation 1 המכילה 2 מ"ל של תמיסה רגילה של טירוד בטמפרטורת החדר. שנית, לדלל את תמיסת מלאי ND6 בתמיסת High-K+ Tyrode (90 mM KCl) בריכוז הסופי של 1 μM. שלישית, החליפו את תמיסת הטירוד הרגילה בצלחת הפטרי בתמיסת טירוד High-K+ המכילה ND6 ודגרו בטמפרטורת החדר למשך 2 דקות.
  4. העבירו את תרבית התאים המסומנת ב-ND6 לתא הדמיה מלא בתמיסת Tyrode רגילה שחוממה מראש ומכילה 10 μM NBQX ו-10 μM D-AP5.
  5. כוונן את מהירות הזילוח ל~0.2 מ"ל/שנייה (כלומר, טיפה אחת לשנייה) והתחל את הזילוח של תמיסת Tyrode נורמלית שחוממה מראש המכילה NBQX ו-D-AP5 כדי להסיר ND6 מוגזם בתרבית.
  6. כוונן את המיקוד ואתר את שדה הראייה המתאים המכיל נוירונים בריאים ומפוזרים היטב הנושאים נוירונים מחוברים. הימנעו מאזורים המכילים קולואידים של צבע לא פתור.
  7. נסה לבצע הדמיה של תאים טעוני ND6 עם זמני חשיפה שונים כדי לזהות את הגדרות ההדמיה הטובות ביותר.
    הערה: לקבלת זמן החשיפה הטוב ביותר, עוצמת הפלואורסצנטיות הגבוהה ביותר של פיקסלים בתמונה המתקבלת היא כמחצית מטווח הסיביות (לדוגמה, עבור תמונה של 16 סיביות, טווח הסיביות הוא בין 0 ל- 65,535), מה שיאפשר עלייה נוספת בפלואורסצנטיות בעת יישום תמיסת האמבטיה החומצית. יש להשתמש בזמן החשיפה שנבחר עבור כל הדמיית ND6.
  8. הגדר את פרוטוקול הגירוי והזילוח, מרווח המסגרות ומשך הזמן הכולל. לדוגמה, בפרוטוקול הבא, השתמש בקו בסיס של 30 שניות, גירוי שדה חשמלי של 10 s 30 Hz, התאוששות של 50 שניות, 120 s 90 mM K+, שחזור של 60 שניות, פתרון של 60 s Tyrode עם 50-mM NH4Cl, 60 s הפתרון של Tyrode ב- pH 5.5, ומרווח מסגרת של 3 שניות.
  9. התחל את רכישת התמונה מלווה בגירוי וזילוח מסונכרנים. עקוב אחר הסימולציה והחלפת הפתרונות במהלך ההדמיה.
  10. הפסק את הזילוח לאחר סיום ההדמיה, הסר את הכיסוי ונקה את תא ההדמיה לקראת הניסוי הבא.

4. כימות הסחר בממברנות על ידי שינוי בפלואורסצנטיות ND6

  1. גבה ו/או צור עותק אלקטרוני של כל קובצי התמונה.
  2. בחר תוכנית ניתוח לחילוץ נתונים, לדוגמה, תוכנת ניתוח תמונות בקוד פתוח כגון ImageJ24 ו / או FIJI25.
  3. פתח או ייבא אוסף תמונות לתוכנית הניתוח.
  4. הגדר את התמונה הראשונה כהפניה ויישר אליה את השאר באמצעות פונקציות/תוספים כגון רישום קשיח26, אשר יקטין את הממצאים עקב היסחפות xy. עיין באיור 8 לדוגמה תמונות.
  5. ממוצע כל התמונות שנרכשו במהלך 30 שנות הטרום בסיס כדי להפיק תמונת התייחסות. שמור עותק של תמונה זו לעיון עתידי.
  6. קבעו את סף העוצמה ליצירת תמונה בינארית מהתמונה עם ממוצע קווי הבסיס.
  7. השתמש בקו פרשת המים ב- ImageJ או בפונקציות דומות בתוכנית אחרת כדי להפריד נוירונים או תאים מחברים.
  8. השתמש בפונקציה Analyze Particle עם גודל שטח ומעגליות מתאימים כדי לבקש אזורי עניין (ROIs) המתאימים לקרומי תאים, אנדוזומים, ליזוזומים או בוטונים סינפטיים. שמור את כל החזר ההשקעה שנבחר.
  9. בחר ארבעה החזר השקעה ברקע באזורים נטולי תאים בשדה הראייה.
  10. מדוד את עוצמות הפיקסלים הממוצעות עבור כל החזר השקעה בכל מסגרת באוסף התמונות, וייצא את התוצאות לניתוח סטטיסטי.
  11. חשב את העוצמה הממוצעת של החזר ההשקעה ברקע כרעש הבסיסי, אשר יופחת מעוצמות הפיקסלים הממוצעות עבור כל החזר השקעה.
  12. ממוצע שלוש העוצמות הממוצעות הגבוהות ביותר עבור כל ROI שנבחר במהלך היישום של פתרון pH 5.5 Tyrode כדי להשיג את עוצמת הפלואורסצנטיות המקסימלית, המוגדרת כ -100% לנורמליזציה.
  13. ממוצע שלוש העוצמות הממוצעות הנמוכות ביותר עבור כל החזר השקעה שנבחר במהלך היישום של 50 mM NH4Cl כדי להגדיר את עוצמת הפלואורסצנטיות המינימלית, המוגדרת כ- 0% לנורמליזציה.
  14. חשב את השינויים הפלואורסצנטיים היחסיים עבור כל החזר השקעה בהתבסס על העוצמות של 0% ו- 100% שלו. להפיק שינויים פלואורסצנטיים ממוצעים, קינטיקה של שינויים וערכים/מגרשים אחרים מנתוני ROI בודדים.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

SVs מתמחים בשחרור נוירוטרנסמיטרים באמצעות exo-/endocytosis27 מעורר. ל-SVs יש לומן חומצי מאוד (כלומר, pH 5.5), שהוא אידיאלי עבור ND6. השתמשנו בגירוי K+ גבוה כדי לעורר SV exo-/אנדוציטוזה כדי לאפשר ל-ND6 לגשת ל-SV. כצפוי, פונקטה פלואורסצנטית ירוקה בהירה לאורך תהליכים עצביים הופיעה לאחר העמסה (איור 9A). פרופיל הקו המוצג באיור 4B הדגים חפיפה חזקה בין ND6 (עקומה ירוקה) לבין FM4-64 puncta (עקומה אדומה). המתאם החזק בין עוצמות פלואורסצנטיות של ND6 ו-FM4-64 מצביע גם על צביעת SV של ND6 (איור 9B).

גירוי חשמלי וגירוי K+ גבוה שימשו כדי לעורר את שחרורם של המאגר הניתן לשחרור בקלות (RRP, כלומר, SVs עם הסתברות שחרור גבוהה) ומאגר המילואים SVs (כלומר, SVs עם הסתברות שחרור נמוכה), בהתאמה. היו ירידות בפלואורסצנטיות של ND6 בתגובה לשני הגירויים (איור 4C ואיור 4E), מה שמרמז על כך ש-ND6 שוכן בקרום SV ושלומן SV מנוטרל (מדווח על ידי ירידת אות ND6) במהלך שחרור SV.

בסוף כל ניסוי, 50 mM NH4Cl יושם כדי להסיר חומציות SVs28 ותמיסת pH 5.5 כדי להבהיר את קרום פני השטח ND6 (איור 4D ואיור 4F). ההבדלים בפלואורסצנטיות מאפשרים לנו לקבוע ND6 בקרום פני השטח (~44%) ובקרום SV (~56%). מספרים אלה תואמים את שברי פני השטח וקרומי SV בהדקי האקסון29, דבר המצביע על כך ש-ND6 מתחלק באופן שווה על פני הממברנות. יתר על כן, אותות ND6 במהלך שני גירויים שונים ושתי מניפולציות pH מאפשרים לנו להעריך כי הפרץ החשמלי הקצר גייס כ~31% SVs וגירוי K+ גבוה שחרר ~70% מה- SVs הנותרים. שיעורי הירידה הפלואורסצנטית של ND במהלך הגירויים תואמים גם את קבוע הזמן עבור אקסוציטוזה SV מעוררתשדווחה בעבר 30.

הגודל הקומפקטי של ND6 מוביל להרבה פחות הפרעה סטרית לקרומי התאים מאשר שיטת תיוגקודמת 14 ולכן מציע מדידה מדויקת יותר של סחר SV. לתמיכה ברעיון זה, ריכוז העמסה גבוה פי עשרה לא הראה הבדל משמעותי בעיכוב FM4-64 במהלך גירוי (איור 10). עם זאת, 1μM עדיין מומלץ בהתחשב בכתמים המתונים שלו באסטרוציטים.

מאחר ש-SV exo-/אנדוציטוזה מערבת כולסטרול (שומנים שופעים וחיוניים בקרומים העצביים), השתמשנו בהדמיית ND6 כדי לשאול כיצד כולסטרול בממברנה משפיע על שחרור SV ושליפתו. 1-mM לטיפול של 90 דקות במתיל-β-ציקלודקסטרין (MβCD) יכול להסיר ~10% כולסטרול מממברנת פני השטח העצבית31, תוך חיקוי ירידה ברמת הכולסטרול בממברנה הקשורה להזדקנות. תחת גירוי חשמלי ממצה, הטיפול ב-MβCD הפחית באופן משמעותי את השחרור והשליפה של SV שנמדדו באמצעות הדמיית ND6 (איור 11A), מה שמרמז על כך שכולסטרול בקרום מאפשר SV exo-/אנדוציטוזה32. כמו כן, הערכנו את תרומתו של כולסטרול לחידוש מלאי SV, שהוא חיוני לאמינות ההולכה העצבית33. שני גירויים חשמליים במרווח של 10 שניות יושמו בנוכחות Bafilomycin A1 (BafA1). BafA1 מעכב באופן סלקטיבי את השימוש ב-v-ATPase שגורם לחומצה מחדש של SVs. על-ידי חסימה חריפה של החמצה מחדש של SVs שאוחזרו, BafA1 מונע התאוששות פלואורסצנטית של ND6 לאחר גירוי (איור 11B). הירידה ב-ND6 במהלך הגירוי השני צריכה להגיע רק מ-SVs חדשים שמחדשים את המחיר המומלץ לצרכן הריק. בהשוואה לבקרת הדמה, תגובת ND6 קטנה משמעותית לגירוי השני נצפתה בנוירונים שטופלו מראש ב-MβCD (כלומר, משרעת קטנה יותר ודעיכה מהירה יותר של הפחתת פלואורסצנטיות ND6). תוצאה זו תומכת ברעיון כי כולסטרול משחק תפקיד מרכזי בגיוס SVs חדשים למחיר מומלץ לצרכן.

Figure 1
איור 1: סכימת סינתזה כללית עבור גשושית ND6. נתון זה שונה מתומס ואחרים 20. אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.

Figure 2
איור 2: מאפיינים של ND6. (A ו-B) תכונות מSolvatochromic של ND6. ספקטרום בליעה (A) וספקטרום פלואורסצנטי (B) בממסים שונים מעוררים ב-405 ננומטר. (C) השוואה של עוצמת פלואורסצנטיות של ND6 במים (אדום) ותמיסת גלוקוזיד אוקטיל 1% ב-1 מיקרומטר. (D) פלואורסצנטיות ND6 כפונקציה של pH בתמיסת OG 1% פרופורציונלית למצב פרוטונציה של קבוצת ראשי פיפרזין (pKa מחושב = 7.4). הכניסה מציגה מצב פרוטונציה מחושב של ND6 piperazine moiety (pKa חזוי = 8.83). הקו המקווקו מייצג ערכים מותאמים. נתון זה שונה מתומס ואחרים 20. קיצורים: DCM = dichloromethane; MeCN = אצטוניטריל; DMSO = dimethylsulfoxide; EtOH = אתיל אלכוהול; MeOH = מתיל אלכוהול; Abs = ספיגה; Em = פליטה; OG = גלוקוזיד אוקטיל. אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.

Figure 3
איור 3: תמונת מצב ממסלול סימולציה של דינמיקה מולקולרית. אינטראקציה של בדיקת ND6 בקרום POPC (פאנל שמאלי). קבוצת ראש פיפרזין מקיימת אינטראקציה חזקה עם קבוצות פוספט (פאנל ימני) באמצעות אינטראקציות אלקטרוסטטיות. החץ השחור (הפאנל הימני) מצביע על הקשר C-N בין טבעת הנפתלימיד לפיפרזין. התוצאות מראות כי קבוצת הפיפרזין נעה רק מעט עם העדפה לזווית הדיהדרלית (אטומים מוצגים) בין 90 ל -120 מעלות תוך שמירה על קונפורמציית הכיסא שלה. נתון זה שונה מתומס ואחרים 20. אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.

Figure 4
איור 4: ND6 מתייג שלפוחיות סינפטיות ומדווח על שחרורן ושליפתן בקצות העצבים. (A) תמונות לדוגמה של FM4-64 (אדום), ND6 (ירוק) ושכבה עליונה (צהוב). הנוירוטים והסומה של תא עצב אחד היו בעלי פרופיל קו. תמונות הקו המיושר (רוחב 20 פיקסלים) נמצאות ליד התמונות המתאימות. ראשי חץ מצביעים על בוטונים סינפטיים המסומנים על ידי FM4-64. פסי קנה מידה = 100 מיקרומטר. (B) פרופילי קו בעוצמות פלואורסצנטיות FM4-64 ו-ND6 מציגים דמיון משמעותי. (C) עקבות דגימה של שינויים פלואורסצנטיים של ND6 בבוטונים סינפטיים המסומנים על-ידי ראשי חץ ב-A בתגובה לגירויים. (D) עקבות דגימה של שינויים פלואורסצנטיים של ND6 בתגובה לתמיסות NH4Cl ו-pH 5.5 Tyrode. (E) הסרת הצביעה של FM4-64 מוצמדת באופן זמני לשינויים בעוצמת ND6. הנתונים מסומנים כממוצע ± עוצמת הפלואורסצנטיות של S.E.M. (F) ND6 אך לא עוצמת FM4-64 הופחתה והוגדלה על ידי היישומים של 50 mM NH4Cl ו- pH 5.5 Tyrode, בהתאמה. הנתונים מסומנים כממוצע ±- S.E.M. נתון זה שונה מתומס ואחרים 20. אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.

Figure 5
איור 5: מערך הדמיה המבוסס על מיקרוסקופ הפוך Nikon-TiE. מבוארים הם ארבעה רכיבים הדרושים להדמיית פלואורסצנטיות של תאים חיים. אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.

Figure 6
איור 6: מערך גירוי-הדמיה. ההתקנה שונתה מתא RC-26 של Warner Instruments ומפלטפורמת חימום PH-1 לבקרת טמפרטורה והחלפת פתרונות. אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.

Figure 7
איור 7: דיאגרמה של תצורות התקנים לרכישת תמונה עם גירויים מסונכרנים וחילופי פתרונות. לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.

Figure 8
איור 8: תמונות לדוגמה המדגימות את השלבים העיקריים בניתוח תמונות. לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.

Figure 9
איור 9: ND6 מדגיש שלפוחיות סינפטיות מקובצות במסופים פרה-סינפטיים. (A) תמונות לדוגמה FM4-64 (אדום) ו-ND6 (ירוק) בהגדלה גבוהה. סרגל קנה מידה = 30 מיקרומטר. (B) תרשים פיזור של FM4-64 ו- ND6 פירושו עוצמות פלואורסצנטיות באותם ROI המתאימים לבוטונים סינפטיים והתאמת רגרסיה ליניארית. r = 0.8353; p = 1.7 × 10-8; שדות תצוגה N = 9; החזר השקעה n = 450. הסף עבור FM4-64 הוא 1,200 au (יחידה שרירותית) ו- 160 au עבור ND6. נתון זה שונה מתומס ואחרים 20. קיצור: החזר השקעה = אזורי עניין. אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.

Figure 10
איור 10: ND6 אינו מתערב עם SVs. (A) תחלופת SV המיוצגת על-ידי ND6 (על-ידי גירוי חשמלי) לאחר העמסה של 1 או 10 מיקרומטר ND6. (B) תחלופת SV שנמדדה ב-FM4-64 (עם הגירוי החשמלי). נתון זה שונה מתומס ואחרים 20. קיצור: SVs = שלפוחיות סינפטיות. אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.

Figure 11
איור 11: הפחתת כולסטרול פוגעת בתחלופת SV. (A) תחלופת SV המיוצגת על ידי ND6 מתחת ל-10 הרץ, גירוי חשמלי של 120 שניות בבקרה ותאי עצב שטופלו ב-MβCD. (B) Bafilomycin A1 מונע החמצה מחדש של SVs ממוחזרים (כלומר, ללא התאוששות פלואורסצנטית ND6 לאחר ירידה מעוררת גירוי) ומבהיר עוד יותר את ההשפעה של MβCD על חידוש SV. נתון זה שונה מתומס ואחרים 20. קיצור: SV = שלפוחית סינפטית; MβCD = מתיל-β-ציקלודקסטרין; BafA1 = Bafilomycin A1. אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

צבעים מבוססי ליפידים, כגון 1,1′-dioctadecyl-3,3,3′,3′-tetramethylindocarbocyanine (DiI) ו- 3,3′-Dioctadecyloxacarbocyanine perchlorate (DiO), שימשו זה מכבר להמחשת מורפולוגיה של תאים ולמעקב אחר תהליכים תאיים כגון תחזיות אקסונים של נוירונים. צבעי סטיריל, כגון FM1-43, הומצאו ושימשו בהצלחה לחקר אקסוציטוזה34. בשל הזיקה הנמוכה שלהם לממברנה, הם מתייגים באופן סלקטיבי בועיות אנדוציטוזיות שבהן הן לכודות בעוד שהצבעים שנותרו על קרום הפלזמה נשטפים על ידי זילוח קבוע. ככאלה, צבעי סטיריל אינם מתאימים לניטור רציף של מחזור שלפוחיות.

ההמצאה האחרונה של GFP רגיש ל-pH (כלומר, pHluorin) אפשרה לדמיין שוב ושוב מיחזור שלפוחית כאשר היא מתויגת לחלבון קרום שלפוחית כגון VAMPII או Synaptophysin35. בהתאם לאותו עיקרון, תיוג פלואורופור רגיש ל-pH למולקולות שומנים מאפשר מעקב אחר מחזור קרום השומנים במהלך מחזורים של אקסו-/אנדוציטוזה14. במקרה זה, בהיותו ישות יחידה של שומנים, ND6 קל יותר להכנה, פשוט יותר ליישום, יעיל יותר לסימון קרומי שומנים, פחות מפריע לתאים, יציב יותר להישאר בקרומי התא, ולכן אמין יותר עבור הדמיה פלואורסצנטית. התלות שלו בקרום ורגישות ה- pH ההופכית שלו מאפשרות צביעה בהירה יותר של אברונים חומציים כגון SVs ואנדוזומים.

יתר על כן, ניתן גם לתייג אברונים חומציים כאלה או טרמינלים קדם-סינפטיים ברקמות כגון פרוסות בהיפוקמפוס כאשר ND6 מופץ באופן לא ספציפי מרוה על ידי pH נייטרלי בחללים חוץ-תאיים או ציטוסוליים. בנוסף, המעבר הגדול שלו לסטוקס הופך את ND6 לאידיאלי להדמיית מולטיפוטונים של רקמות עמוקות. לכן, ND6 ופלואורופורים אחרים מבוססי pH רגישים לשומנים מאפשרים מדידה אופטית בזמן אמת של תנועת שומנים וקרום התא בין קרום הפלזמה לבין מנגנון תוך תאי כגון SVs ואנדוזומים עבור סבבים מרובים של אקסו-/אנדוציטוזה. בהתחשב בכך שסינפסות ו-SVs חיוניים להולכה עצבית, ND6 ללא ספק שימושי לחקר הפיזיולוגיה הסינפטית.

בהתחשב בעיצוב המודולרי של אנלוגים ליפידים אלה, ניתן להצמיד ND לשומנים אחרים, כגון פוספוליפידים וספינגוליפידים, בסוגים שונים של קרום התא או אברונים. יתר על כן, ניתן להחליף את קבוצות ND בפלואורופורים רגישים לסביבה אחרים כדי לזהות גורמים סביבתיים אחרים כגון ריכוז סידן או אבץ בתוך או מחוץ לתאים או אברונים. יתר על כן, פלואורופורים עם ספקטרום פליטה שונה יכולים להיות מקושרים לשומנים בממברנה כדי להרחיב את פלטת הצבעים של כתבי השומנים. עבור כל השינויים הללו, ניתן לכוונן את המקשר בין ליפידים לבין ND או קבוצות פלואורסצנטיות אחרות כדי להשיג תכונות צילום טובות יותר ו / או רגישויות רצויות.

פרוטוקול זה מתאר את השימוש ב-ND6 בהמחשת תחלופת SV באמצעות דימות תאים חיים. השלבים הקריטיים כוללים העמסה, גירויים מסונכרנים וכימות פלואורסצנטי, שכולם משפיעים באופן משמעותי על איכות התוצאות. יתר על כן, ניתן לשנות את הפרמטרים/ההגדרות המשמשים בשלבים אלה בהתאם לצרכי המחקר. לדוגמה, ניתן לכוונן את הגירוי במהלך הטעינה (משך זמן קצר או ארוך יותר) כדי לאפשר גישה למאגרים שונים של SVs (בריכות עם הסתברויות גבוהות או נמוכות לשחרור, בהתאמה). עבור הדמיה פלואורסצנטית של תאים חיים, חשוב לאזן בין בריאות התא לבין עוצמת הפלואורסצנטיות, וזה חשוב במיוחד כאן. הסיבה לכך היא שהעירור של ND6 הוא קרוב ל-UV (כלומר, 405 ננומטר), מה שיכול לגרום ליותר פוטוטוקסיות ופירוק צבע מאשר אור נראה. לכן, חשוב להתאים את עוצמת העירור, זמן החשיפה, קצב הפריימים ומשך ההדמיה כדי למזער את נזקי האור ולמקסם את איכות האות.

ND6 היא בדיקה מעניינת מאוד. משמרת סטוקס הגדולה שלו אפשרה להשתמש בו בו זמנית עם צבעי ממברנה אחרים כגון FM4-6420. חשוב מכך, הוא מועמד מתאים לתרומת אנרגיה להעברת אנרגיית תהודה פלואורסצנטית (FRET) ויכול להיות נרגש על ידי אור סגול, אשר יהיה הרבה פחות סביר לרגש את מקבל FRET. צבעים מחקי שומנים, כגון ND6, מאפשרים לחקור את יחסי הגומלין בין חלבוני הממברנה והשומנים במהלך אקסו/אנדוציטוזה. הקשר תלוי ה- pH והדיסוציאציה בין חלבוני הממברנה והשומנים יועצמו בלומן החומצי של SVs או אנדוזומים, מה שיקל על חקר תפקידם של שומני הממברנה באנדוציטוזה ומיון בתיווך קולטן. לסיכום, ND6 ונגזרותיו יכולים להרחיב באופן משמעותי את ארגז הכלים לחקר ליפידים בממברנות והסחר בהם בתאים חיים.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

המחברים מצהירים כי אין אינטרסים כלכליים מתחרים.

Acknowledgments

עבודה זו נתמכה על ידי משרד המחקר והחקירה לתואר ראשון של אוניברסיטת פלורידה אטלנטיק (M.J.S.), מענק פיילוט של מחלקת הבריאות של פלורידה אד ואתל מור 20A17 (Q.Z.), מענק איגוד האלצהיימר AARG-NTF-19-618710 (Q.Z.), ומענק NIA R21 AG061656-01A1 (Q.Z).

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Digidata 1440A Data Acquistion System Molecular Devices Digidata 1440A For synchronized stimulation and solution exchange
Dual Channel Temperature Controller Warner Instruments TC-344B For live-cell imaging
Fetal Bovine Serum OMEGA Scientific FB-01 For making H+20 solution used in dissection and tissue culture
Hamamatsu Flash4.0 sCOMS camera Hamamatsu Inc. C13440-20CU high-sensitivity camera
Hank's Balanced Salt Solution Sigma H6648 For making H+20 solution used in dissection and tissue culture
Heated Platform Warner Instruments PH-1 For live-cell imaging
Matrigel BD Biosciences 354234 For tissue culture
Micro-G Vibration Isolation Table TMC 63-564 For live-cell imaging
Micro-manager https://micro-manager.org/ NA For image acquisition control
Multi-Line In-Line Solution Heater Warner Instruments SHM-6 For live-cell imaging
Neurobasal Plus Medium THermoFisher Scientific A3582901 For tissue culture
Nikon Ti-E Inverted Microscope Nikon Ti-E/B For live-cell imaging
ORCA-Flash4.0 Digital CMOS camera Hamamatsu C1340-20CU For live-cell imaging
Perfusion Chamber Warner Instruments RC-26G For live-cell imaging
Six-Channel Valve Control Perfusion System Warner Instruments VC-6 For solution exchange
Square Pulse Stimulator Grass Instrument SD9 For electric field stimulation

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Polo, S., Pece, S., Di Fiore, P. P. Endocytosis and cancer. Current Opinion in Cell Biology. 16 (2), 156-161 (2004).
  2. Eckert, G. P., Wood, W. G., Muller, W. E. Lipid membranes and beta-amyloid: a harmful connection. Current Protein and Pept Science. 11 (5), 319-325 (2010).
  3. Augustine, G. J., Burns, M. E., DeBello, W. M., Pettit, D. L., Schweizer, F. E. Exocytosis: proteins and perturbations. Annual Review of Pharmacology and Toxicology. 36, 659-701 (1996).
  4. Ammar, M. R., Kassas, N., Chasserot-Golaz, S., Bader, M. F., Vitale, N. Lipids in regulated exocytosis: what are they doing. Frontiers in Endocrinology. 4, 125 (2013).
  5. Jahn, R., Lang, T., Sudhof, T. C. Membrane fusion. Cell. 112 (4), 519-533 (2003).
  6. Chabanon, M., Stachowiak, J. C., Rangamani, P. Systems biology of cellular membranes: a convergence with biophysics. Wiley Interdisciplinary Reviews. Systems Biology and Medicine. 9 (5), 1386 (2017).
  7. Prosser, D. C., Wrasman, K., Woodard, T. K., O'Donnell, A. F., Wendland, B. Applications of pHluorin for quantitative, kinetic and high-throughput analysis of endocytosis in budding yeast. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (116), e54587 (2016).
  8. Burrone, J., Li, Z., Murthy, V. N. Studying vesicle cycling in presynaptic terminals using the genetically encoded probe synaptopHluorin. Nature Protocols. 1 (6), 2970-2978 (2006).
  9. Miesenböck, G., De Angelis, D. A., Rothman, J. E. Visualizing secretion and synaptic transmission with pH-sensitive green fluorescent proteins. Nature. 394 (6689), 192-195 (1998).
  10. Chan, Y. -H. M., Boxer, S. G. Model membrane systems and their applications. Current Opinion in Chemical Biology. 11 (6), 581-587 (2007).
  11. Demchenko, A. P., Mély, Y., Duportail, G., Klymchenko, A. S. Monitoring biophysical properties of lipid membranes by environment-sensitive fluorescent probes. Biophysical Journal. 96 (9), 3461-3470 (2009).
  12. Hoopmann, P., Rizzoli, S. O., Betz, W. J. Imaging synaptic vesicle recycling by staining and destaining vesicles with FM dyes. Cold Spring Harbor Protocols. 2012 (1), 77-83 (2012).
  13. Gaus, K., Zech, T., Harder, T. Visualizing membrane microdomains by Laurdan 2-photon microscopy. Molecular Membrane Biology. 23 (1), 41-48 (2006).
  14. Kahms, M., Klingauf, J. Novel pH-sensitive lipid based exo-endocytosis tracers reveal fast intermixing of synaptic vesicle pools. Frontiers in Cellular Neuroscience. 12, 18 (2018).
  15. Zhou, L., Xie, L., Liu, C., Xiao, Y. New trends of molecular probes based on the fluorophore 4-amino-1,8-naphthalimide. Chinese Chemical Letters. 30 (10), 1799-1808 (2019).
  16. Tomczyk, M. D., Walczak, K. Z. l,8-Naphthalimide based DNA intercalators and anticancer agents. A systematic review from 2007 to 2017. European Journal of Medicinal Chemistry. 159, 393-422 (2018).
  17. Ulla, H., et al. Blue emitting 1,8-naphthalimides with electron transport properties for organic light emitting diode applications. Journal of Molecular Structure. 1143 (5), 344-354 (2017).
  18. Duke, R. M., Veale, E. B., Pfeffer, F. M., Kruger, P. E., Gunnlaugsson, T. Colorimetric and fluorescent anion sensors: An overview of recent developments in the use of 1,8-naphthalimide-based chemosensors. Chemical Society Reviews. 39 (10), 3936-3953 (2010).
  19. Panja, S. K., Dwivedi, N., Saha, S. Tuning the intramolecular charge transfer (ICT) process in push-pull systems: Effect of nitro groups. RSC Advances. 6 (107), 105786-105794 (2016).
  20. Thomas, D., et al. Solvatochromic and pH-sensitive fluorescent membrane probes for imaging of live cells. ACS Chemical Neuroscience. 12 (4), 719-734 (2021).
  21. Leslie, K. G., Jacquemin, D., New, E. J., Jolliffe, K. A. Expanding the breadth of 4-amino-1,8-naphthalimide photophysical properties through substitution of the naphthalimide core. Chemistry - A European Journal. 24 (21), 5569-5573 (2018).
  22. Liu, G. S., Tsien, R. W. Properties of synaptic transmission at single hippocampal synaptic boutons. Nature. 375 (6530), 404-408 (1995).
  23. Zhang, Q., Cao, Y. -Q., Tsien, R. W. Quantum dots provide an optical signal specific to full collapse fusion of synaptic vesicles. Proceedings of the National Academy of Sciences of the Unites States of America. 104 (45), 17843-17848 (2007).
  24. Rueden, C. T., et al. ImageJ2: ImageJ for the next generation of scientific image data. BMC Bioinformatics. 18 (1), 529 (2017).
  25. Schindelin, J., et al. Fiji: an open-source platform for biological-image analysis. Nature Methods. 9 (7), 676-682 (2012).
  26. Thevenaz, P., Ruttimann, U. E., Unser, M. A pyramid approach to subpixel registration based on intensity. IEEE Transactions on Image Processing. 7 (1), 27-41 (1998).
  27. Sudhof, T. C. The synaptic vesicle cycle. Annual Review of Neuroscience. 27, 509-547 (2004).
  28. Lazarenko, R. M., DelBove, C. E., Strothman, C. E., Zhang, Q. Ammonium chloride alters neuronal excitability and synaptic vesicle release. Scientific Reports. 7 (1), 5061 (2017).
  29. Wilhelm, B. G., et al. Composition of isolated synaptic boutons reveals the amounts of vesicle trafficking proteins. Science. 344 (6187), 1023-1028 (2014).
  30. Rizzoli, S. O., Betz, W. J. Synaptic vesicle pools. Nature Reviews. Neuroscience. 6 (1), 57-69 (2005).
  31. DelBove, C. E., et al. Reciprocal modulation between amyloid precursor protein and synaptic membrane cholesterol revealed by live cell imaging. Neurobiology of Disease. 127, 449-461 (2019).
  32. Dason, J. S., Smith, A. J., Marin, L., Charlton, M. P. Vesicular sterols are essential for synaptic vesicle cycling. Journal of Neuroscience. 30 (47), 15856-15865 (2010).
  33. Chanaday, N. L., Cousin, M. A., Milosevic, I., Watanabe, S., Morgan, J. R. The synaptic vesicle cycle revisited: New insights into the modes and mechanisms. Journal of Neuroscience. 39 (42), 8209-8216 (2019).
  34. Betz, W. J., Bewick, G. S. Optical analysis of synaptic vesicle recycling at the frog neuromuscular junction. Science. 255 (5041), 200 (1992).
  35. Afuwape, O. A., Kavalali, E. T. Imaging synaptic vesicle exocytosis-endocytosis with pH-sensitive fluorescent proteins. Methods in Molecular Biology. 1474, 187-200 (2016).

Tags

תחלופת שומנים בממברנה אנלוג שומנים פלואורסצנטיים רגישים ל-PH ND6Exo-/אנדוציטוזה החלפת ביומולקולות תאים מיוחדים הפרשת אינסולין שחרור מוליכים עצביים מחקר אקסו/אנדוציטוזה רמת גנים וחלבונים מחזור שומנים בממברנה קרום פלזמה שלפוחיות הפרשה פיזור שומנים תאי קרום תוך תאי קצב תחלופת שומנים תחומי מחקר ביולוגיים
מדידת תחלופת שומנים בממברנה עם ND6 אנלוגי פלואורסצנטי רגיש ל- pH
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Alamgir, S., Pelletier, O. B.,… More

Alamgir, S., Pelletier, O. B., Thomas, D., Rubio, V., Stawikowski, M. J., Zhang, Q. Measuring Membrane Lipid Turnover with the pH-sensitive Fluorescent Lipid Analog ND6. J. Vis. Exp. (173), e62717, doi:10.3791/62717 (2021).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter